Преди хранене за храната на белия амур в щаба на Молдова
Днес във водните басейни на Молдова успешно се внедряват къртици – толстолоб и бял амур. Това е много важно за извличането на допълнителни рибни продукти чрез отстраняване на жизнената част от естествената хранителна основа с вода. Въпреки това, за успешното изпълнение на тази задача е необходимо да се проучи подробно разнообразието от екологични умове, които изискват развитието на тези риби в нашите водоеми, както и хранителните доставки за тях. Също така е необходимо да се знае как хранителните запаси се консумират от новите заселници.
През 1961 г. докладвахме резултатите от изследването на значителен брой екземпляри от бял толстолоб в чревния тракт по целия свят с ларви. в Регионалния държавен университет Фалещи. Събирането на материали започва през 1962 г. Друга съдба беше животът на тези риби и те бяха дъвчени до пролетта на 1965 г. включително.
Взехме данните, за да покажем, че в съзнанието на щаба на Молдова белият амур е, наред с други неща, vikoryst създания на hydrobionti. Представители на зоопланктона са открити в червата само на 24% от наблюдаваните риби. В този случай в повечето случаи броят на зоопланктера в червата стана 1-2 вида, а дори в едно черво бяха идентифицирани 8 вида. В червата, които изследвахме, бяха идентифицирани 18 вида зоопланктери, като кожната им плътност беше много ниска. Само копеподните стадии на копеподите са съжителствали в седем вида, не повече от 2-3 черва. Зоопланктериите започват да растат в изобилие, особено през пролетта и пролетта, когато броят на фитопланктона в популацията е най-нисък. Това се вижда ясно от насочването маса 1Показано е, че максималното количество зоопланктон в червата съответства на най-малкото количество фитопланктон през периода на наблюдение. Всичко това води до идеята, че тълпата от объркване преминава към хранене със зоопланктон само в периоди, когато фитопланктонът в популацията е изключително беден. В други периоди самотната консумация на зоопланктери в толстолобия шаран понякога е епизодична, тогава P. M. Saxena правилно отбелязва. Показателно е, че нивата на зоопланктона, който расте в присъствието на толстолоб, са разнообразни и богати [Зеленин и Набережни, 1962], но не могат да бъдат засегнати от големия толстолоб.
Основният източник на храна за сребърния шаран във водоемите на Молдова са планктонните водорасли. Концентрацията на фитопланктон в червата, които наблюдавахме, стана 100%. В спектъра на личинки от 45 екземпляра толстолоб, които прегледахме, идентифицирахме 102 вида и разновидности на планктонни водорасли, Cyanophyta - 8, Bacillariophyta - 14, Chrysophyta - 1, Pyrrophyta - 1, Euglenophyta - 27, Volvociphyceae - 3, Protococcophyceae -45 и Desmidiales -3. Същото разнообразие от основните групи планктонни водорасли е характерно за нашите нива, включително тези на Държавния университет на река Фалести, където растат риби, които се наблюдават. Най-важните различни групи водорасли в уловения толстолоб са били дукталните и еугленовите водорасли. Тези групи също имат предимство пред фитопланктона в повечето от нашите залози.
Преди биомасата доминиращите групи водорасли в спектъра на ларвите на толстолобия шаран изглежда са били евгленоиди и синьозелени, често поради интензивния „цвят“ на водата във водата. Лише на кочана вересня 1962 В спектъра на личинки на толстолоба, съдържанието на диатомитна вода е по-важно. Cyclotella meneghiniana, средната вагина в червата беше 8 рубли. ( маса 1). В червата на големи екземпляри риба съдържанието на вода в диатомеите преди този период е било около 16 g, или 91% от съдържанието на вода в гърдите на ларвите.
маса 1
Смяна на запасите на таралежите при белия амур зад скалите
Компоненти изяждане кома |
1962 г. б. | 1963 г. б. | ||||||
VI | VIII | IX | V | VI | VIII | IX | XII | |
Средна вага ребро, ж |
58 | 182 | 381,5 | 455 | 350 | 597 | 523 | 359 |
vaga grub гърди, ж |
3,5 | 9,5 | 19,2 | 17 | 8 | 25 | 29 | 3,2 |
средата индекс до % |
563 | 524 | 428 | 376 | 221 | 421 | 556 | 89 |
запознанства клатушкане водорасли до vagi таралежи. гърди, % |
7,3 | 2 | 46 | 14 | 7 | 1,4 | 1,6 | 0,3 |
водорасли | ||||||||
Cyanophyta | 0,04 | 0,03 | 0,03 | 0,02 | 0,03 | 0,07 | 0,07 | 0,0003 |
Bacillariophyta | 0,001 | 0,02 | 8,02 | — | 0,06 | 0,03 | 0,02 | 0,0005 |
Euglenophyta | 0,26 | 0,10 | 2,54 | 1,82 | 0,28 | 0,16 | 0,03 | 0,0002 |
Protococco- phyceae |
0,005 | 0,01 | 0,05 | 0,40 | 0,07 | 0,04 | 0,03 | — |
Usyogo водорасли, g |
0,30 | 0,19 | 9,58 | 2,37 | 0,53 | 0,32 | 0,35 | 0,01 |
Зоопланктон, ж | 0,06 | 0,007 | — | — | — | — | — | — |
продължение
Компоненти изяждане кома |
1964 r. | 1965 r. | |||||
V | VII | VIII | х | IV | VI | IX | |
Средна вага ребро, ж |
1450 | 1083 | 1680 | 2500 | 1377 | 3000 | 2866 |
vaga grub гърди, ж |
46 | 33 | 21 | 6 | — | — | 26 |
средата индекс до % |
316 | 321 | 255 | 24 | 4,1 | — | 90,3 |
запознанства клатушкане водорасли до vagi таралежи. гърди, % |
46,2 | 29 | 8,7 | 0,08 | — | — | 4,4 |
водорасли | |||||||
Cyanophyta | 22,2 | 9,60 | 1,60 | — | 0,03 | 0,001 | 2,34 |
Bacillariophyta | 0,05 | 0,01 | 0,03 | 0,002 | 0,01 | 0,004 | 0,015 |
Euglenophyta | 0,60 | 0,37 | 0,06 | — | 0,03 | 0,01 | 2,81 |
Protococco- phyceae |
0,05 | 0,05 | 0,01 | 0,003 | 0,003 | 0,02 | 0,02 |
Usyogo водорасли, g* |
23,5 | 10,1 | 1,62 | 0,005 | 0,04 | 0,04 | 5,91 |
Зоопланктон, ж | 0,015 | — | — | 0,4 | 0,47 | — | — |
(* ястието на коми храната е образувано от смлени водорасли и минерални частици)
Показателно е, че в спектъра на личинки на толстолоб, уловен на ръба, диатомичните изпражнения до голяма степен доставят храна на същите евгленови и синьо-зелени водорасли.
В чревния тракт на риба, уловена близо до Квитна, видовото съдържание на фитопланктон е много лошо, а средното количество водорасли в комата на личинката не надвишава средно 0,038 рубли. с colivanny в различни копия от 0,011 до 0,064 rub. в средната ваза с риба през 1317 г. стойността на зоопланктона в комата на личинките през този период достига своя максимум - 0,047 rub. Доминиращото водорасло в хранителния спектър на толстолоба през пролетта е еугленовата. В тревата броят на видовете водорасли в спектъра на ларвите на толстолоба се увеличава значително и такива видове като Scenedesmus quadricauda, S. bijugatus, S. arcuatus var. платидискус, Crucigenia quadrataПротококите стават невидима част и доминират в редица индивиди. Добра биомаса в трева 1963 r. ясно надвишават евгленовите водорасли в средно 1824 рубли. главно за миди от видове като Euglena acus, E. texta, E. oxyuris, Stromobmonas acuminata var. verrucosa, Trachelomonas intermedia, Phacus orbicularisта в. Zagalna vaga algae near travni 1963 r. В червата рибата е средно 2371 рубли. или 14% от солената вода на гърдата на рибата със средна купа риба 455 rub. У Травна р.1964г Средната цена за гърди е 23 475 рубли. 46,2% от yogo zagaliy vaga. Показателно е, че в червата на няколко екземпляра количеството водорасли достига 46,388 или 91% от водното съдържание на ларвата. Количеството риба никога не надвишава 1500 рубли. Важна група водорасли в близост до таралеж шаран близо до тревата, 1964 r. синьо-зелени куршуми, важно Oscillatoria sp.., средната цена беше 22 237 рубли. с коливанни от 0,122 до 44,352 rub. в гърдите на личинка с индекс на горната част на червата според Zenkevich 24-321 ‰. Разумно е да се каже, че същият този вид синьо-зелени водорасли превъзхожда таралежите в липата на същата скала. Максималното количество вода през тази година беше 27 g, с дълбока ваза с водорасли в червата от 28 g и ваза с риба 1800 r.
При черешите броят на водораслите в спектъра на ларвите на толстолобите е незначителен. Това се обяснява с факта, че през този период, както установихме [Shalar, 1963], развитието на фитопланктона във водите на Молдова претърпя значителен спад поради промени в метеорологичните и хидроложките фактори. През този период основната част от гърдата на ларвата се състоеше от части от муле и топинги. Най-важното място сред водораслите в червата на толстолоба, уловен в червея, беше заето Scenedesmus quadricauda, S. acuminatus, Coelastrum sphaericum, Cyclotella sp., Synedra ulna, vidi Euglena, Phacus, Trachelomonas, а синьо-зелените най-често стават по-плътни през този период Oscillatoria sp. ta Merismopedia tenuissima. Всички тези видове по това време са доминиращи в нивата на фитопланктона. При липата, сърпа и особено при пирена фитопланктонът започва да развива масово синьо-зелени водорасли. Aphanizomenon flos-aquaeИ в резултат на това става доминиращ в гърдичките на толстолоба. Така например през пролетта на 1965 г. Това водорасло е пълно с Microcystis aeruginosa, както може да се види от маса аз, поставяйки средната стойност на 2338 рубли. и в червата на тяхната вага достигна 4672 рубли. за средната 3000 rub. Ясно е, че противно на твърденията на Р. А. Савина, в наблюдаваните от нас водоеми толстолобият шаран яде безразборно всички видове водорасли, които растат в планктона. Масивни видове фитопланкта продължават да доминират в спектъра от риби, които проследихме. Не беше възможно да се долови жизнеността на толстолобите до пеещите видове водорасли, които едва ли ще изчезнат.
През зимата, след проведени предпазни мерки при бебета, родени през 1963 г., количеството на водорасли в червата на рибите не надвишава 10 mg. Разнообразието от водорасли в спектъра на храната на толстолобия шаран през зимата стана почти невъзможно да се види: Lobomonas denticulata, Cyclotella sp., Trachelomonas sp. ta Oscillatoris sp. Показателно е, че фитопланктонът в тези проценти е изключително беден и информацията тук изглежда е характерна за тях през този период.
По този начин промените в хранителния спектър на толстолобите през сезоните до голяма степен ще бъдат в рамките на сезонните промени в нивата на фитопланктона. Тази позиция се потвърждава и от промяна в повърхностния индекс, който по време на периода на развитие на фитопланктона достига максимални стойности ( маса 1). А фактът, че белият толстолоб се храни с всички видове водорасли, които растат в планктона, разкрива широкия потенциал за по-нататъшното разпространение на тези ценни видове риба във водите на Молдова, фитопланктон, който е богат както на чист, така и на трезв.
Списък на организми, открити в червата на толстолоб и стотици от тях
назовавайте организмите | срещнах чай- отмъщение % |
назовавайте организмите | срещнах чай- отмъщение % |
Cyanophyta |
Protococcophyceae |
||
Daclylococcopsis irregularis Г. М. Смит |
2 | Schroederia setigera (Шред) Лем. |
51 |
Merismopedia tenuissima Леним |
37 | Sch. spiralis (Printz) Корщик. |
2 |
Micricystis aeruginosa Kütz. |
22 | Lambertia ocellata Korschik. | 2 |
M. pulverea (Дърво) Forti |
7 |
Pediastrum boryanum |
7 |
Gomphosphaeria lacustris Чод |
14 | P. duplex Meyen | 4 |
Aphanizomenon flos-aquae |
40 |
Tetraedron caudatum |
4 |
Oscillatoria sp. | 100 | T. minutissimum Korchik | 4 |
Romeria leopoliensis (Racib.) |
2 | T. incus (Teiling) Г. М. Смит. |
2 |
Bacillariophyta |
Oocystis borgei Snow | 4 | |
Мелосира гранулата (Ehr.) Ралфс |
2 | Oocystis sp | 24 |
Melosira sp. | 2 |
Анкистродесъм |
20 |
Cyclotella meneghiniana Кютц |
90 | A. acicularis (A. Br.) Корщик. |
40 |
Synedra actinastroides Лемн |
2 | A. arcuatus Korschik. | 33 |
S. ulna (Nitzsch) Ehr. | 9 | А. Ангустус Борн. | 61 |
Rhoicosphenia curvata (Kütz.) Grun. |
2 | A. falcatus (Corda) Ralfs | 4 |
Navicula sp. | 20 | Hyaloraphidium ректума Корщик. |
15 |
Pinnularia sp. | 2 | H. contorlum Pasch. et Корщик. |
4 |
Caloneis amphisbaena |
2 |
H. contortum var. |
4 |
Gyrosigma sp. | 2 |
Kirchneriella obesa (Запад) |
20 |
Nitzschia acicularis W. Sm. | 4 | K. lunaris (Kirchn.) Moeb. | 9 |
N. reversa W. Sm. | 3 | Dispora crucigenioides Printz. |
2 |
Nitzschia sp. | 50 |
Dictyosphaerium |
11 |
Surirella ovata Kütz. |
14 | Coelastrum sphaericum Наег. |
13 |
Хризофита |
C. microporum Naeg. | 16 | |
Goniochloris fallax Fott |
7 | Crucigenia apiculala Шмидъл |
15 |
Pyrrophyta |
C. fenestrata Schmidle | 15 | |
Glenodinium sp. | 4 | C. tetrapedia (Kirch.) В. и В. |
37 |
Euglenophyta |
C. quadrata Morren | 4 | |
Trachelomonas volvocina |
2 |
Тетраструм |
4 |
T. intermedia Dang. |
31 | T. glabrum (Roll) Ahlstr. еф Тиф. |
13 |
T. abrupta Swir. |
19 | Actinastrum hantzschii var. fluviatile Schroed. |
9 |
T. planctonica Swir. |
29 | A. hantzschii var. gracile Руло |
33 |
T. asymmetrica Roll. |
15 | Scenedesmus obliquus (Turp) Kütz. |
7 |
T. bernandinensis |
4 | S. acuminatus (Lagerh.) Chod. | 64 |
Trachelomonas sp. |
80 |
S. acuminatus var. biseriatus Reinh |
23 |
Strombomonas acuminata var. verrucosa Teod. |
15 | S. acuminatus var. elongatus Smith | 7 |
S. deflandrei (Roll) Defl. | 2 | S. bijugatus (Turp.) Kütz. | 33 |
S. fluviatilis (Lemm.) Defl. | 11 | S. arcuatus var. платидискус Смит. | 7 |
S. Treabii (Wolosz.) Defl. | 2 | S. apiculatus (W. и W.) Chod | 2 |
Euglena polymorpha Dang. | 2 | S. brasiliensis Bohl | 2 |
E. spathirhyncha Skuja | 4 | S. quadricauda (Turp) Breb | 73 |
E. texta (Duj.) Hübner | 24 |
S. quadricauda var. eualternans Proschk. |
2 |
E. vermicularis Prosch.- Лавр. |
2 | S. opoliensis Richt | 9 |
E. acus Ehr. | 73 | S. opoliensis var. alatus Deduss. | 2 |
E. oxyuris Schmarda | 25 | S. protuberans Fritsch. | 17 |
Euglena sp. | 40 |
Desmidiales |
|
Lepocinclis ovum (Ehr.) Норка. |
2 | Closterium acicularis | 2 |
Lepocinclis sp. | 7 | Closterium sp. | 26 |
Phacus curvicauda Swir. |
22 | Cosmarium sp. | 2 |
Ph. arnoldii Swir. | 29 |
Ротаториум |
|
Phacus pleuronectes (Ehr.) Дудж. |
4 | Brachionus angularis | 4 |
Ph. orbicularis Hübner | 29 | B. bennini | 2 |
Ph. longicauda (Ehr.) Duj. | 4 | Keratella cochlearis | 2 |
Ph. longicauda var. tortus Lemm. | 9 | Lecane sp. | 2 |
Phacus sp. | 33 | Colurella Adriatica | 7 |
Volvociphyceae |
Asplanchna sieboldi | 2 | |
Lobomonas denticulata Корш. |
4 |
Cyclopidae |
|
Phacotus coccifer Korsch. | 11 | Науплийски циклоп | 9 |
Pandorina morum (Müll.) Bory |
4 | Копиопидитен стадий на Циклоп | 15 |
Cladocera |
Acanthocyclops vernalis | 11 | |
Ювенилна дафния | 2 | Циклоп вицинус | 11 |
Мойна Дубия | 2 | Paradiptomus alluaudi | 4 |
Leydigia leidigii | 2 | ||
Alona sp. | 2 | ||
Chydorus sphaericus | 2 |
ЛИТЕРАТУРА
Зеленин А. М., Набережни А. И. Преди хранене на бял амур (Ctenopharyngodon idella Vab) и толстолоб (Hypophtalmichthys molitrix Vab.) в Молдова. Водни биологични ресурси в Молдова, 1962 г.
Савина Р. А. Добив на бял амур. В събота: Рибогосподарско развитие на риби, носещи водорасли. М., 1966.
Saxena R. A. Algoflora от държавното стопанство на река Калган-Чирчик и хранителните доставки на екстремния толстолоб. Автор. Доцент доктор. дисертация, 1965г.
Shalar V. M. Характеристики на развитието на фитопланктона в резервоара Dubossary. Резюме на Ph.D. дисертация, 1963г.
© 1970. Авторските права върху статията принадлежат на V.M. Шалар, А. М. Зеленин, А. И. Набережный (Институт по зоология, Академия на науките на Молдовската ССР).
Възпроизвеждането и копирането на статията е разрешено поради указания на автора и инструкции, изпратени на страницата, |
Планктонни водорасли (фитопланктон)
Фитопланктонът е колекция от малки, предимно микроскопични водорасли, които се носят свободно във водата. Това е основната екологична група водорасли, която произвежда първична органична вода, без която е невъзможно да се открие целия живот във водно тяло. В процеса на еволюция планктонните водорасли са развили ниски структури, които им позволяват да останат близо до водата за дълго време. При планктонните водорасли, които нямат камшичета, повишената плаваемост се постига чрез значителна еднаква форма на тялото и наличието на различни структури и придатъци, четина, рогови придатъци, peretinok ta in. Други форми на планктонни водорасли са представени от плоски или празни колонии, които са ясно видими като слуз. Много водорасли се натрупват в кулминацията на реката с по-малко от една храна (например мазнина, масло) или създават газови вакуоли. Една от особеностите на планктонните водорасли, която им позволява да съществуват в общи води на определена територия, е различната големина на тялото им. Поради по-малкия си размер и следователно малка маса, планктонните водорасли не потъват толкова бързо на дъното с водата.
Планктонните водорасли висят около водни обекти с голяма надморска височина, като езера, дренажни басейни и малки езера. Типичният фитопланктон е особено характерен за големи водни тела.
В зависимост от размера си фитопланктонните водорасли се делят на мезо-, микро- и нанопланктон.
Водораслите с размери 1-5 mm се пренасят в мезопланктонния фитопланктер. Това е безбройна група колониални организми. Sphaeronostoc кихлманита в.). Водораслите с големина на тялото от 50 µm до 1 mm достигат групата на микропланктонните организми. Нанопланктонните организми покриват тялото с размери по-малки от 50 микрона. Когато се вземат проби от планктонен слой, вонята лесно преминава през суха тъкан.
В сладководния планктон най-голямо разнообразие се намира в зелените, диатомеите и цианите. Сред зелените са ясно представени едноклетъчни, ценобиални и колониални видове (видове) Volvox. Хламидомонада, Гониум, Пандорина, Еудорина, Волвокс) и Chlorococcus (видове от реката Pediastrum, Scenedesmus, Oocystis, Golenkinia, Sphaerocystis, Chlorella, Kirchneriella, Ankistrodesmus и др.). Характерни представители на диатомовите водорасли в планктона са видовете канопи Мелосира, Фрагилария, Табелария, астерионела, Циклотела.Цианите често и ясно се оформят като планктерии. микроцистис, Анабаена, афанизоменон, Глоотрихията в. От камшичести форми в сладководния планктон, първичните динофити - Цератийі Перидин; От златни - видове сенници динобрион, Маломонас, Уроглена, Синурата ин.; от евгленоиди - видове сенници Trachelomonas, Факус, еугленаИ останките ясно се развиват в други водни тела, които се затоплят добре.
В меки води на блатисти води и води се развива броят на представителите на desmidea: видове сенници клостериум, Космариум, Еуаструм, ставраструм, Микрастерии, ксантидий, десмидиумта в.
Близо 1000 вида планктонни водорасли са наблюдавани в различни водоеми и водни течения на Беларус.
Видовият състав на фитопланктона и неговият брой варират в различните водни тела и могат да бъдат намерени в едно водно тяло по различно време, лежащо сред съвкупността от богати служители. Най-важни са светлината, температурата и химичните условия, както и антропогенният принос. Остава в някои случаи да доведе до изчерпване на фитопланктона, в други – до значително повишаване на тяхната продуктивност. Когато голям брой биогенни потоци навлизат във водата, настъпва бурно развитие на планктонни водорасли, което оцветява водата в зелено, синьо-зелено и други цветове. Това явление е породило името „цвят“ на водата, тъй като 1 литър вода съдържа милиони клетки от планктонни водорасли. В резултат на масовото им разпространение може да се види наводнение от вода и други токсични вещества, които могат да доведат до смъртта на зооценозите от вода. Трябва да се вземат предвид следите и тези, че токсичните вещества изглежда са причинени от различни водорасли (например видове Микроцистис) в процеса на техния живот.
Ефектът от осветлението като служител на околната среда се проявява ясно във вертикалното разделяне на фитопланктона. В езерата, например, планктонните водорасли се задържат на върха на водата, но могат да се развият на дълбочина 10-15 м. Водораслите са способни да се развиват, докато зеленината стане по-ярка. Най-интензивно е през лятото. И така, водораслите на балдахините микроцистис, Анабаена, афанизоменонВ масата се развиват само белите на повърхността на водата. Mensh са в състояние да достигнат леки диатомични водорасли. Повечето от тях в плитките води на езерото и водосборните басейни се развиват по-интензивно на дълбочина 2–3 m.
Температурният фактор също е един от най-важните фактори, влияещи върху фитопланктона. Има видове, които се развиват по-рядко в студени водоеми; Можете да видите какво е да виждате води с топла вода. Има много водорасли в сгради, където можете да живеете близо до водите, където температурният диапазон на Коливан е още по-голям.
Тъй като температурният оптимум при различни видове планктонни водорасли не се поддържа, има промяна във видовия модел на сезоните (сезонна сукцесия). Вегетационният цикъл на фитопланктона започва от бреза-квитна. По това време масовите планктери имат различни флагелати. Хромулина, Cryptomonasброят на видовете студеноводни диатомеи нараства – Мелосира, Диатома. През другата половина на пролетта студеноводният диатомитен комплекс се развива бързо. Притокът изглежда е умерено топловодни диатомеи – астерионела, Табелария, Зелените и синьо-зелените водорасли се развиват по-интензивно. През другата половина на лятото синьо-зелените и зелените водорасли достигат своето максимално развитие, което може да причини „оцветяване” на водата. Диатомеите през периода включват топловодни представители на короните Фрагиларияі Мелосира гранулата. През пролетта студеноводните двуатомни заедно със синьо-зелените водорасли започват да се развиват по-интензивно, които ще продължат да се развиват.
Природната вода съдържа различни химични съединения, необходими за развитието на фитопланктона. Най-важните от тях са минералните соли (биогенни елементи). От минералните соли в развитието на фитопланктона (и водораслите) са необходими соли на азот и фосфор. По правило във водните зони очевидно няма достатъчно сполук. Елементите на хранене с водорасли включват слюнка и калций. Лакомите водорасли са богати на диатомеи и десмидии. Силицият е необходим за формоването на черупката на диатомеите. Магнезият, калият и сярата също са основни елементи за водораслите, но във водата винаги има достатъчно от тях.
Планктонните водорасли са основните, а често и единствените производители на първична органична материя, която е необходима за оцеляването на всички живи същества във водните тела. Планктонните водорасли участват активно в самопречистването на водата. Мулетата, сапропелите и други отлагания се образуват от потопени планктонни водорасли. Образуват се планктонни водорасли като индикатори за запушване на водата. Вонята може да бъде източник на протеини, витамини и овощни градини за много индустрии.
Neuston
Фрикционните водорасли и същества, които се задържат близо до зоната на повърхностния поток на водата, се пренасят към нейстона. Епиневстонът е разделен на организми, които живеят над повърхностната течност, а хипонейстонът е организмът, който се прикрепя към повърхностната течност отдолу.
Най-често неустоновите организми могат да бъдат намерени в други водни тела (близо до калюжи, канавки, ставки) при тихо време. Представители на различни систематични групи влизат в склада на neuston: Златни води ( Кремастохризис, Хромулина), Евгленови ( еуглена, Trachelomonas), Зелени ( хламидомонада, Кремастохлорис, Наутококи), Жовтозелени ( Ботридиопсис).
В процеса на еволюция много водорасли нейстон са създали специални устройства за разпръскването им по повърхността. Такива устройства включват, например, чаши за слуз и бански костюми.
Клиновете на тези водорасли често стърчат повече от половината над повърхността на водата поради факта, че техните мембрани са вредни за намокряне с вода. Когато е ветровито, дъските могат напълно да се вкопчат във водата, но когато вятърът е твърде силен, вятърните крушки ще избухнат в пламъци, което ще накара виното да изплува на повърхността.
В няколко епизода на неустоновите водорасли слоевете се развиват интензивно, покривайки водата с дебел слой течност.
Бентосни водорасли (фитобентос)
Бентосните водорасли могат да бъдат достигнати от същите форми, които растат на дъното на водата. Бентосните водорасли се утаяват преди да изсъхнат върху различни предмети, потопени във вода, както и върху живи и мъртви организми, разположени близо до водата. Такива форми на водорасли, които влизат в групата на натрупване, понякога се разглеждат като перифитонни водорасли.
Най-важните водорасли на бентоса са различни зелени, харофитни, диатомични, синьо-зелени и жълто-зелени водорасли.
От зелени водорасли във водни обекти от различни видове често се кондензират видовете сенници кладофора, ризоклониум, Едогониум, Улотрикс, стигеоклониум, ДрапарналдияТова е талусът на кладофора, който е жилав на точка, наречен тъмнозелен храст. Талусът на ризоклониума е изграден от леко меки и понякога нежелиращи нишки. И двата представителя могат да се абсорбират в субстрата и да образуват дълготрайни кални пространства. Талусът на едогония е представен от меки, непрекъснати нишки с чаши, понякога сферични оогонии и фракционни клетки - антеридии. Ulotrix може да се види в появата на яркозелени чимове, които са нагънати на нишки и не стават копринени. Расте върху различни твърди субстрати, които се намират близо до повърхността на водата. При появата на малки лигавични снопчета, които са прикрепени към потопените корени на израстъци и други субстрати, може да се открие стигеоклония и драпарналдия.
Най-големите талами със сгъваеми разчленения се люлеят от химически водорасли. Хара и нитела често се срещат в езера и реки с тинесто дъно под формата на плътни чагарници.
На дъното на водата често и често ясно се образуват различни диатомични водорасли - Pinnularia, Навикула, гиросигма, Циматоплевра, Диатома, Фрагиларията в.
От синьо-зелени водорасли, бентосни форми - основният ранг Осцилатория, Лингбя, Phormidium, Nostoc.Части от синьо-зелени водорасли, които покриват дъното с вода, свързват и уплътняват субстрата. Върху такъв субстрат е по-лесно да се установят и да растат други бентосни водорасли. В жълто-зелените водорасли често се развиват бентосни форми Ваучерияі Трибонема.При първия талията е от леко желирани дебели конци без прегради, при другия - от преградни, неконцови конци.
От водораслите, които изглеждат като нишки, които не са прикрепени към субстрата, които се развиват в реки, канавки и други малки водни тела, както и в близост до крайбрежната зона на големи езера и резервоари, е важно спирогира, Зигнема, Mougeotia, Осцилатория, Лингбя. Наред с тях в същите тези места на обитаване са широко представени различни диатомични водорасли.
Части от водорасли често образуват големи слузни мембрани, които плуват на повърхността на водата през деня и потъват на дъното през нощта. Сянката на яркозелен цвят е характерна за зигнема водорасли, кафяво-зелено - за циан.
В близост до крайбрежната част на реките, в канавки, потоци, потоци, където водата е с много азотсъдържаща вода, се развива Хидродиктион ретикулатум. Това водорасло има мрежа, която достига 1,5 m наведнъж.
На дъното на плитки и застояли води, в средата на чагарка и нишковидни водорасли, често се развиват неприкрепени едноклетъчни водорасли ( З хлорокок, Hypnomonas, клостериум, Космариум ta in), ценен ( Scenedesmus, Педиаструм ta in), мукозни колониални форми ( Тетраспора, Гло еохлориста в.). Цялата воня не предполага специално придържане към долния начин на живот. Действия от тях ( Scenedesmus, Педиаструм) е по избор бентосни и по избор планктонни форми.
Растежът на бентосните водорасли като фототрофни организми изисква светлина. В резервоари с различна степен на прозрачност на водата бентосните водорасли са разпределени вертикално по различни начини. Горната сфера обаче е населена с по-мощни, светлозелени водорасли. Най-долните сфери са населени с диатомеи. Те са типични сапротрофи, които могат да живеят в дълбоки дълбини, ровейки се на върха на мулето и пясъка.
В близост до реки и потоци се наблюдава интензивно развитие на бентосни водорасли, което води до постоянно смесване на водата. В такива райони с водорасли водата съдържа повече киселинност и биогенни (живи) потоци. Поради това бентосните водорасли, които се развиват в канализацията на водата, преодоляват предимствата на нивото с водорасли, които живеят в близост до застояли водоеми. Водните басейни с малка дълбочина, слаб воден поток и твърди почви, върху които се отлагат органични излишъци, са много благоприятни за пребиваването на бентосни водорасли.
Перифитонни водорасли
Към перифитонните водорасли има водорасли, които растат върху различни живи организми (дебели водни водорасли, малки водорасли, водни същества) и на повърхността на различни твърди субстрати, както изкуствени (палми, кейове, земя, плът и др.), така и под вода пънове, заровени във вода; мъртви листа от дървета и чаени листа и др.). Перифитонните водорасли се отстраняват от дъното и в съответствие с дънните форми живеят при различни светлинни, температурни и трофични режими. Те се прикрепят към субстрата с помощта на специални органи (подметка, стъпало, лигавици) или лигавичната повърхност на размразяването.
Хранилището на перифитона включва водорасли от различни систематични групи, които се контролират от представители на вида Chlorophyta, Cyanophyta, Bacillariophytaі Xanthophyta.
Z viddilu З хлорофитанай-познатите видове Улотрикс, Едогониум, Афанохета, Хараций. Представители на Veddilu често се появяват в околната среда Cyanophyta (Осцилатории, Лингбя, Ривулария, Глоотрихия), които са прикрепени към подводни субстрати за допълнителна слуз. Широко и ясно как са представени перифитонните водорасли Bacillariophyta: гомфонема, който се прилепва към субстрата с помощта на лигавици или връзки; НавикулаКакво може да присъства в лигавицата или да е живо в слузните тръби; Коконеис, който прилепва плътно към подложката с долния стол. З Xanthophytaкак типовете покриви стават по-често срещани в перифитона Ваучерия, Трибонема, Heterococcus.
Най-приятният субстрат за перифитоновите водорасли са нишките Cladophora, Ваучерия, Едогониум. Върху слузните нишки конюгатът и водораслите не се развиват.
Редица видове перифитонни водорасли ( Тетраспора, Хараций, Апиоцистиси също така) се установява върху субстрати с висока хранителна плътност. Є представители с тясна специализация към субстрата (напр. Heterococcus mucicolaсе развива в слуз Колеохета пулвината).
Перифитонните водорасли, заедно с други организми, които създават условия на околната среда, играят важна роля в живота с вода. Миризмата на органична реч, храна за водни създания, се използва като индикатор за киселинността на водата. Това е естествен биофилтър с вода. Отрицателната му роля се крие във факта, че миризмите могат да бъдат открити във водни резервоари, тръбопроводи, а също така да причинят растеж на важни и други обекти, като трудно време близо до водата.
Сухоземни и аерофитни водорасли
Те се колебаят във водни купи върху различни твърди субстрати, заточени на повърхността. Затова се наричат още ветровити водорасли. Типични субстрати за тях са дървесна кора, стари дървени паркове, dakha budinki и камък.
Влажните зони на тези водорасли се характеризират с чести промени в температурата, краткотрайни валежи, мъгла и роса. Незасегнати от враждебните умове на живота, смлените водорасли често се развиват с висока скорост, образувайки подобни на прах или слуз утайки, извара и течности на повърхността на субстратите.
От адаптивните устройства на аерофитите до неприятелските умове на живота, има силно удебеляване на стените на клиента; изтъняване на остатъците от слуз, така че водата да може да се накисва за дълго време; натрупване на голям брой липиди в клетките; лекота на разпадане на таламуса по време на вегетативно размножаване върху околната тъкан.
Преди враждебните наземни селища животът е бил само въпрос на десетки морски водорасли. Има буквално стотици видове. Всички миризми са с микроскопични размери. Сред тях има едноклетъчни, колониални и някои, повечето зелени и синьозелени, по-рядко представители на диатомичните водорасли.
Накарайте зелените водорасли да растат върху кората на дърветата. Те се виждат навсякъде и ясно Плеврококі Трентеполия. Първият създава яркозелено покритие върху основите на стволовете, а другият придава на стволовете цяло червеево покритие. Тези умове може да са напрегнати от други зелени водорасли – Хлорела, Chlorococcum, Stichococcus.
Водораслите, които се установяват върху мъховете, са по-малко забележими. Кремът от зелени водорасли, върху мъховете има диатомеи, жълто-зелени и синьо-зелени.
Смлени или едафофилни водорасли
Почвените водорасли се натрупват както на повърхността на почвата, така и в почвата, повърхностната топка от няколко сантиметра. Почвата, като място на произход, се характеризира с вариации в съдържанието на влага и температура. Повърхността на почвата изпитва силна инсолация, топките почва трябва да лежат по-дълбоко - не достатъчно дълго, или светлината ще отсъства напълно. В повърхностната почва водораслите са фототрофи, докато в почвата водораслите се консумират като сапротрофи.
Почвеното ядро може да се разглежда като ядро, което заема междинна позиция между вятърното и водното ядро. Именно през почвата има много водорасли, за да преминат към земния начин на живот.
Идентифицирани са близо 2000 вида земни водорасли. Най-голям брой от тях са синьо-зелени и двуатомни. Разумно е да им пожертвате жълти зеленчуци. Понякога се срещат златисти, еугленови и динофитни.
Голяма част от подпочвените водорасли създават слуз, която предпазва клетките от изсушаване и екстремни температури. Високата устойчивост на навлизането на неприятни фактори в средната вода се дължи на високия вискозитет на цитоплазмата и високата концентрация на целулозен сок.
На повърхността на земята, особено по краищата на калюжа, тя често става назъбена Ботридиум. В сенчести, влажни зони зелените водорасли могат да се развият на земята. Стигеоклониум, жълто-зелено водно съдържание Ваучерия, както и в палмелоподобно тяло с единични клетки Хламидомонада, Мезотаениум. На почви, силно замърсени с амониеви замърсители, растежът на зелените плочи често е воднист Прасиола. В тези места на пребиваване могат да се развият синьо-зелени водорасли (напр. Phormidium) и се наричат още нитрофилни водорасли.
Трябва да се доведат до типични смлени водорасли Chlorococcum хумикола, Бумилерия сикула, вижте Ботридиопсис, Плеврохлорис магна, Монодус acuminata, Хетеротрикс exilis, Навикула мутика, Pinnularia бореалис, Hantzschia амфиоксис.
Има различни методи за събиране и третиране на водорасли. Това се дължи както на екологичното и морфологичното сходство на представители на различни отрасли и екологични групи, така и на разнообразието от цели и подходи към тяхното развитие. Тук е невъзможно да се дадат повече подробности за всички методи за извличане на вода, особено тихите, които са насочени към постигане на специални цели. Ето защо в този раздел ще се съсредоточим върху методите за събиране и инокулиране на водорасли от континентални води за целите на флористично-систематични и хидробиологични изследвания.
Поради факта, че повечето водорасли имат микроскопични размери, обикновено е възможно да ги откриете с непредубедено око в естествените процеси, като правило, това е възможно само за ума на масово развитие, което изисква промяна във ферментацията. вода за: вода, почва или друг субстрат („цвят“ на водата, „цвят“ на почвата и др.). Количеството на водораслите не е толкова значително; При събиране на материал проследяването трябва да се извърши в този случай, ако най-важното изследване на субстрата не позволява те да бъдат маркирани с незащитено око.
Методи за вземане на проби от фитопланктон
Изборът на метод за вземане на проби от фитопланктон зависи от вида на резервоара, етапа на развитие на водораслите, задачата на изследването, наличието на оборудване и др. . Въпреки това, в повечето случаи, различни методи за предна концентрация на микроорганизми стагнират. Един от тези методи е филтриране на вода през планктонни мембрани с различна структура (фиг. 7.1).
малък 7.1. Планктонни мерки: 1-3 – мерки на Апщейн; 4 – подгъв; 5 – стъкло пред него; 6 - цилиндрична рамка "zepelin"
Планктонната мрежа се формира от пръстен от месинг и сито, пришито до края от найлон или найлоново сито № 77, което съдържа 5929 меша на 1 cm 2 . Диаграмата на конусната намотка за границата на планктона е показана на фиг. 7.2. Тесният изходен отвор на конусообразната торба е здраво закрепен към бутилката, което води до видима тръба, затворена с кран или уплътнение Mora. Когато събирате вода от повърхността на планктона, спуснете планктонната мрежа във водата така, че горният отвор на мрежата да е на 5-10 cm над нейната повърхност. С литрова купа загребете вода от повърхностната топка (до 15-20 см дълбочина) и я изсипете в пространството, като по този начин филтрирате 50-100 литра вода. В големи водни басейни се вземат проби от планктон от повърхността. В този случай се препоръчва издърпване на планктонната ограда на тънко въже зад повърхността, която се руши, с дължина 5-10 минути.
За вертикални колекции от планктон използвайте прегради със специален дизайн. В малките водоеми пробите от планктон могат да се събират от брега, като влизате стъпка по стъпка във водата, внимателно загребвате вода с чаша пред себе си и я филтрирате през мярка или като хвърлите мярка на тънка нишка във водата вода и внимателно го издърпайте. След като приключите със събирането на планктона, изплакнете планктонната мрежа, като я спуснете веднъж във вода до горния пръстен, за да отстраните водораслите, натрупани по вътрешната повърхност на мрежата. Пробата от планктон се концентрира по такъв начин, че да е в контейнер за планктон и се излива през видима тръба в буркан или купа, приготвена на заден план. Преди прибиране на реколтата и след приключване на вземането на пробите е необходимо да се изплакнат обилно, а след приключване на работата слоевете да се изсушат в специално покритие. Често пробите от планктон могат да бъдат култивирани в живо или фиксирано състояние.
За да получите ясна картина на фитопланктона, изберете проби от почвата. Този метод може да се използва за събиране на проби и измерване на количеството вода, филтрирано през водата и събраната проба. Трябва обаче да вземете проби за голямо количество фитопланктон, като използвате специални устройства - батометри с различен дизайн (фиг. 7.3). Широко застой на практика, след премахване на батометъра на системата Rutner (раздел. Фиг. 7.3, 1). Основната му част е цилиндър, изработен от метал или плексиглас, с вместимост 1-5 литра. Регулирайте горната и долната капачка, за да затворите плътно цилиндъра. Спуснете батометъра във водата, като използвате затворените капаци. Когато се достигне необходимата дълбочина, поради силното смачкване на макарата, капаците се затварят, отворите на цилиндъра се затварят и цилиндърът се изтегля на повърхността, когато е затворен. Напълвам бутилките с вода през тръбата на варела, с кран и я изсипвам в подготвения съд.
При инокулиране на фитопланктон от повърхностните водни сфери, пробите се събират чрез загребване на вода в контейнер. Във водни обекти с беден фитопланктон е важно да се събират проби с обем най-малко 1 литър успоредно с вземането на маржови проби, което ви позволява да улавяте множество, равномерно големи обекти. Във водни обекти, богати на фитопланктон, обемът на киселинната проба може да бъде променен до 0,5 l или до 0,25 l (например с "оцветена" вода).
Концентрирането на твърди проби за фитопланктон може да се извърши по два метода, които дават приблизително еднакви резултати - утаяване и филтриране. Кондензацията на пробите по метода на утаяването се извършва след предварителното им фиксиране и престояване на тъмно място в продължение на 15-20 дни чрез изстискване на средната топка вода с помощта на стъклена тръба, единият край на която е изтеглен Използвайте сито № 77 близо до топките, а другият се свързва към маркуч за дъвка. Изследването трябва да се извършва много внимателно и внимателно, за да не се допусне нарушаване на обсадата и оголване на повърхността на топката. Пробата се уплътнява по този начин и след като умре, се прехвърля в по-малък съд.
Когато кондензирате проби с помощта на метода на филтриране, използвайте „предни“ филтри и, ако е необходимо (тъй като размерът на планктонните организми е много малък), използвайте бактериални филтри. В този случай водните проби не се определят предварително и се събира фитопланктон от живи организми. За да осигурите правилното запазване на филтъра, фиксирайте филтъра в центъра.
Методи за вземане на проби от фитобентос
Обичайните методи за събиране на проби от фитобентос включват събиране на водорасли, които се поставят на повърхността на дънните почви и наноси, в тях (на дълбочина до 1 cm) и в специфична дънна топка вода с дебелина 2-3 cm. и е достатъчно видовият запас от фитобентос да бъде изтеглен върху повърхността на почвените вложки. В плитка вода (до 0,5-1,0 m дълбочина) можете да достигнете с друга епруветка или сифон, спуснат до дъното - дъвен маркуч със стъклени тръби в краищата, в който се накисва зелевото руло (фиг. 7.4, 1 ). На големи дълбочини пробите се събират с помощта на сито или бутилка, прикрепена към пръчка, както и с нарязани гребла, „черва“, драги, драги, смукателни помпи, които са най-прости в готова и ръчна смукателна помпа ( Фиг. 7.4, 2). Основната част на това устройство е U-образна тръба с неравни краища. Тънка метална тръба е свързана към късия край на тръбата, докато дълъг маркуч за хумус се свърже към дългия край. В този край на U-образната тръба, зад хуминова запушалка, е закрепена колба с широко гърло. Към дългия отворен край на тръбата е прикрепен прът. Приставката зад макарата се спуска до дъното на водния резервоар, където под въздействието на водата дългият край на U-образната тръба се врязва в долната обвивка; След като този край на маркуча за дъвка, който остава на повърхността, се притиска на място, позволявайки на вятъра да излезе, и мулето се вкарва в буркана през другия край на тръбата. След това приборът се издърпва на повърхността и вместо бурканите се прехвърля в препарата за тестване на съдовете. За да съберете големи проби от фитобентос, използвайте микробентометър Volodymyrivna. Основната част от него е месингова тръба с дължина 25-30 см с вътрешен диаметър 4-5 см, върху стойка, върху която да се покрие зоната на вътрешния срез на тръбата. В горния край на тази тръба има втулка с конусообразен капак, в който херметично трябва да влезе шлифованата капачка-вентил (фиг. 7.5). Тръба с отворен капак върху разглобяема дървена пръчка се спуска на дъното и долният заострен край се врязва в почвата на дъното до няколко сантиметра. След като издърпате макарата, прикрепена към здравия край на връвта, затворете горната втулка с капака на тръбата, след което приставката внимателно се издърпва върху повърхността. Когато тръбата излезе от водата, долният отвор на тръбата се затваря плътно, за да се предотврати падането на почвата. След като отворите капака, внимателно изсипете горните топки вода близо до стъкления съд, докато се появи каламутът. Изливам порция вода зад борда, за да отмъстя на планктона. Водата, която е останала в тръбата, или почвата е лесна за раздробяване и прехвърляне от препарати за тестване на съдове, като предварително е замразен обемът им. Микробентометър Volodymyrovy ръчен на дълбочина 2,0-2,5 m.
малък 7.4. Устройство за вземане на проби от фитобентос: 1 – сифон; 2 - смукателна помпа Perfilyeva; 3 - бутилка за мулу; 4 - цебро за мулу; 5 – гребла; 6 - "червата"
По-пълен модел на микробентометър, който ви позволява да събирате проби от всякакъв вид глина, е разработен от В. С. Травянок и Л. В. Евдокимова (фиг. 7.5). Микробентометърът Травянко и Евдокимова се състои от тръба с дължина 30-35 cm и вътрешен диаметър 5-6 cm, закрепена в горната част с автоматично работещ стабилизиращ клапан. На мирен двигател спуснете тръбата със затворен клапан във вертикално положение над страната на лодката. Под действието на клапата, закрепена към фитинга, тръбата се врязва в дъното, при което клапата херметически затваря горния отвор. За допълнителна помощ, двигателите завъртат приставката върху повърхността; Когато водата излезе, долният отвор на тръбата се затваря напълно. След това горната топка вода се излива през борда през тръбата на цевта и тръбата, която съдържа монолита с почвата и излишната вода, се завинтва от стабилизатора с клапанна кутия, източва се и се замразява и пробата се прехвърля в ястия, приготвени за него.
Методи за вземане на проби от перифитон
За да се тества специфичното съхранение на перифитон, отлаганията по повърхността на различни подводни обекти (камъчета, трошен камък, камъни, стъбла и листа от високи водни растения, черупки на мекотели, дървени и бетонни части от хидравлични спори и др.) се отстраняват преди това с помощта на основен нож или специални стъргалки и лъжици (Фигура 7.6). При този гинеколог обаче има много различни организми. Някои от тях се отнасят от потоци вода, органите (органели), прикрепени към водораслите към субстрата, се срутват, картината на взаимното разположение на компонентите на биоценозата се разрушава. Поради това е по-добре водораслите да се съберат наведнъж от субстрата, който или старателно, или често внимателно се изтегля върху повърхността на водата, така че течението да не отмие водораслите. Подготвеният субстрат (или негов фрагмент) се поставя с водорасли в съд, приготвен за пробата и напълнен или с малко количество вода и вода, последвано от по-нататъшно инокулиране на събрания материал в живо състояние, или с 4% формалдехид.
За да се получи голяма проба от перифитона, препоръчително е да се измият водораслите от повърхността на измития субстрат с допълнителна вода и четки върху широк съд (кювета, леген) и след като се накисне измиването, да се прехвърли в препарата за пробни ястия. Необходимо е да се знае площта на субстрата, която причинява образуването на водорасли. За да направите това, покрийте повърхността с вълнена кърпа и очертайте контурите й с мастило. Възстановяването на повърхността се извършва по метода на средните площи: прехвърлете контура на повърхността на субстрата върху проследяваща хартия и го извайвайте; От тази хартия изрежете квадрат със страна 1 см (плоско 1 см2) и го почетете. Като знаете теглото на хартиения квадрат и теглото на хартиения контур, покрийте необходимата площ.
При заразяване с епифитни водорасли, които се натрошават от стъблото на листата на високите водни плевели, повърхността на растението се разрязва не само на една площ, но и на една единица маса (сурова и изсушена-суха) на плевелния субстрат. За тази цел се засажда парцел от растящи растения, от повърхността на който се отстраняват епифитите, след което се изсушава, докато изсъхне от вятъра и се засажда отново.
Методи за събиране на смлени и смлени водорасли
Смлените водорасли, които разтварят тиня и тиня по дървета, скали, камъни, суха земя, градини и стени на къщи и др., се събират, ако е възможно, веднага от субстрата в стерилни хартиени торби или колби, съдържащи 4% формалдехид. Методите за събиране и третиране на смлени водорасли са описани в специализирана литература.
Етикетиране и фиксиране на пробите, провеждане на теренни проби
Целият събран материал се разделя на две части, като се използва методът за по-нататъшно смилане на водорасли в живо и фиксирано състояние. Живият материал се поставя в стерилно шише, епруветки, колби, буркани, затворени с памучни запушалки, без да ги гори, или в стерилни хартиени пликове. За да се запазят водораслите в условията на живот в експедиционните резервоари, водните проби се опаковат в мека хартия и се поставят в кутии. Периодично се опитвайте да разопаковате и излагате на руска дневна светлина, за да поддържате фотосинтетичните процеси и обогатяването с киселинност. Независимо от всички чуждестранни посещения, не всички събрани материали могат да бъдат запазени, така че за работа с жив материал кратките екскурзии са приятелски, но не и най-трудните експедиции.
Материалът, който насърчава фиксацията, се поставя в нестерилни съдове (епруветки, купи, буркани), плътно затворени с гумени или коркови запушалки. Водните проби се фиксират с 40% формалдехид, който се добавя към пробата в съотношение 1:10. Водораслите, които се намират върху твърд субстрат (върху хартиени филтри, камъчета, празни черупки на мекотели и др.), трябва да се напълнят с 4% формалдехид. Доброто опазване на водораслите и тяхното съхранение също ще осигури отстраняването на формалдехид и хромирана плитка (5 ml 4% формалдехид и 10 g K 2 SO 4 ⋅ Cr 2 (SO 4) 3 ⋅ 24H 2 Около 500 ml вода). На полето можете също да разтворите йод с калиев йодид (разтворете 10 g KI в 100 ml вода, добавете 3 g кристален йод и още 100 ml вода, разклатете до пълното разтваряне на кристалите, запазете в тъмна бутилка десетки месеци), които се събират в извадка от мача 1:5. Херметически затворени, фиксирани проби могат да се съхраняват на тъмно до три часа.
Всички новобранци трябва да бъдат внимателно етикетирани. На етикетите, които съдържат обикновена маслина или паста, която не се отмива с вода, посочете номера на пробата, часа и мястото на събиране и името на събирача. Тези данни се записват едновременно в полевата инсталация, която освен това включва резултатите от pH, температурата на водата и вятъра, схема на бебето и доклад за водния резервоар, който се наблюдава, който се развива в новата водна растителност Други предпазни мерки.
Методи за ясна обработка на материали
Събраният материал първо се изследва под микроскоп на живото място в деня на събиране, за да се определи киселинността на водораслите преди момента на промяната, при съхраняване на живия материал или фиксиране на проби (създаване на репродуктивни клетки, преход от палмела -подобна структура, разрушаване на клетки, колонии, загуба на флагели и ронливост и др.) d.). След това събраният материал ще бъде обработен паралелно на живо и фиксиран етап. Работата с жив материал е необходима за успешното инокулиране на водорасли, което се променя при фиксиране на формата на тялото, формата и съдържанието на хлоропластите, които губят камшичета, ронливост или са склонни да ни развалят, ледът се излива с фиксатори. За да запазите събрания материал жив, внимавайте да го предпазите от прегряване, запушване с фиксатори и продължете възможно най-скоро.
Водородите в битови условия, в зависимост от техния размер и други характеристики, трябва да се изследват с помощта на допълнителна бинокулярна стереоскопична лупа (MBS-1) или по-често с помощта на светлинни микроскопи от различни марки с различни системи окуляри и лещи, в светлина, за да преминат чрез, или чрез метод на фазов контраст, следвайки основните правила на микроскопията
За микроскопско третиране на водорасли пригответе препарати: нанесете капка ряпа върху обекта, който ще наблюдавате, и го покрийте с извито стъкло. Ако водораслите живеят във вода, те се поставят близо до капка чешмяна вода или напоен с глицерин. Когато се инжектира с лекарството, зоната под кривината постепенно изсъхва и след това се добавя. За да промените изпарението, нанесете тънка топка парафин по ръбовете на извитата чаша.
Ако е необходимо да се погрижите за самия обект, методът с висяща капка дава добър резултат. На чиста повърхност нанесете малка капка от готовия ръб, след което ръбовете на извивката се намазват с парафин, парафиново масло или вазелин, поставете капката надолу върху специална повърхност с дупка в средата, така че въжето да направи не стърчи дъното на дупката (малък 7.7). Това лекарство може да се прилага в продължение на няколко месеца, като се запазва по време на почивките между работата във вологична камера.
С навлизането на водорасли, които нарушават монадната структура, сериозен срив води до нейната крехкост. Въпреки това, когато приемате лекарството, болката постепенно се успокоява и се забавя. Укрепването на сместа се постига и чрез леко нагряване на препарата или добавяне на черешово лепило. Препоръчва се водораслите да се фиксират по двойки с осмиев (IV) оксид (който помага за запазване на камшичетата), кристален йод (фиксирането по двойки с йод позволява не само да се запазят флагелите, но и да се подготви нишесте, както и e, син цвят , което има по-голяма диагностична стойност), 40% формалдехид, слаб разтвор на хлоралхидрат или хлороформ. Ефективността на излагане на двойки фиксатори се определя експериментално в зависимост от спецификата на обекта. Най-трудните препарати са слабо фиксираните, в които някои от водораслите са загубили своята ронливост, а други продължават да са доста ронливи. Препаратите се навиват внимателно след фиксация; фрагментите се деформират за кратък период от време с водорасли (особено отстраняването на тъканните мембрани).
В много случаи, в допълнение към морфологичния анализ на признака, се използват цитологични методи за прехвърляне на материала. В случай на инфекция на вътрешни клетъчни структури, особено в други флагели, оцеляването на препарата с помощта на слаби (0,005-0,0001%) степени на неутрално червено, метиленово черно, неутрално черно, трипаново червено, диамантено крезил синьо, конго червено , зеленото ясно показва кожната обвивка, папилите, слузта, вакуолите, митохондриите, апарата на Голджи и други органели.
Bagato Barvnikiv дава добър резултат от лъжите на празнината на специалните методи на fіksatsіі (с Vivchenna formaldegiz, пробите на barvniki е лишеят на лишаването от запазване на поклонението на дистроилизирания от дестилирания резервоар). Най-добрият фиксатор за цитологично изследване на водорасли, включително развитието на тяхната ултраструктура - 1-2% осмиев (IV) оксид (не позволява запазване на тривали). Водораслите, които не оцветяват мембраните, могат лесно да се фиксират с метанол. Разтворът на Лугол (1 g калиев йодид и 1 g кристален йод в 100 ml вода) не само фиксира добре водораслите, но и незабавно елиминира нишестето в сини цветове.
Ядрено натоварване. За инокулиране на ядра можете успешно да използвате алкохолно-октолов фиксатор на Clark (3 части 96% етилов алкохол и 1 част етилов алкохол) или разтвор на Карнуа (6 части 96% етилов алкохол, 3 части хлороформ и 1 част октоева киселина). Оставете водораслите в прясно приготвен фиксатор за 1-3 години, след което изплакнете с 96% етилов алкохол (2 пъти) и вода (10 пъти). Трябва да се отбележи, че в случай на цитологична инфекция на водорасли в повечето случаи е важно да се изберат най-ефективните фиксатори, маркери за хамбар и време на експозиция въз основа на спецификата на обектите.
При подготовката на ядрата по метода на ацетокармин, предварителната фиксация с алкохолно-октанов фиксатор се подлага на излишък от вода, което води до набъбване на тъканните мембрани. За да приготвите барвник, варете 2 g кармин в 400 ml 45% октоева киселина в продължение на 4 години, като изплакнете в хладилник. За останалото можете да vikorystvovat първоначално ругаене към лейката. Охладете тъмночервеното вино, филтрирайте и го съхранявайте за дълго време в съд от тъмно стъкло. Капнете капките вода с водорасли върху предметното стъкло, добавете пъстърва, покрийте с извито стъкло и дръжте сместа под микроскоп. За бързо приготвяне препаратът се загрява внимателно над половин газов съд, като се избягва кипенето под извитата повърхност. Ядрата се образуват от базалните тела на флагели, вакуоли и пиреноиди.
За развитието на митозата и цитохимичното откриване на ДНК е от съществено значение реакцията на Feulgen, която причинява образуването на ядрен хроматин; В този случай цитоплазмата става безплодна. За да извърши реакцията, Feulgen подготвя три заповеди. Rozchin A: смесете 82,5 ml концентрирана солна киселина с 1000 ml дестилирана вода. Rozchin B (реактив на Шиф): 1 g основен фуксин се разтваря в 200 ml копър, охлажда се до 50 ° C, филтрува се, добавят се 20 ml разреждане А и след охлаждане до 25 ° C се разтваря 1 g безводен Na 2 SO 4 и след това се добавят 300 mg активиран вугил; След 24 години това разделение трябва да бъде напълно развалено, тъй като спестява риска от разваляне, преди да се подготви ново разделение. Розчин: смесете 200 ml вода с 10 ml 10% Na 2 SO 4 и 10 ml Rozchin A.
След третиране с фиксатор на алкохолна основа, материалът се запечатва за 6-8 минути (часовете на експозиция се избират експериментално) за обработка А, загрява се до 60°C, след това се измива при студена обработка А, изплаква се с вода и се затваря за 1 година при лечение B; след това, след трикратно измиване с розмарин, изплакнете с вода и пригответе траен препарат. Трябва да се отбележи, че при някои водорасли, например видове Spirogyra Link, Oscillatoria Vauch., ДНК в присъствието на реагента на Шиф дава много слаба реакция на Feulgen.
Често добавяйте хематоксилин за приготвяне на ядра от водорасли. Прясно приготвените хематоксилинови продукти нямат никаква преструвка. Появява се около десет часа след "узряването" на гниенето, когато хематоксилинът се окислява. Най-често използвани за водорасли са хематоксилинът на Хайденхайн и хематоксилинът на Делафийлд. Първата боровинка е достатъчно узряла за готвене, докато другата отнема няколко месеца, за да се подготви. За да приготвите хематоксилин на Heidenhain, пригответе два препарата. Розчин А смесват 2,5 g лизоаминови галуни в 100 ml вода, Rozchin B - 10 ml 10% алкохолен хематоксилин (в абсолютен етилов алкохол) в 90 ml вода. Розчин Б е виновен за силно винено-червено опиянение. След фиксация материалът се обработва 6-12 години (в зависимост от спецификата на обекта) в секция А, след което се изплаква обилно с дестилирана вода и кора в секция Б за 12-24 години (също в зависимост от обекта). Областта на подготовка на материала се диференцира с постоянен контрол в детайли и след това се изплаква отново с дестилирана вода и се промива с вода за 10-30 минути. Хроматиновите структури на ядрата, базалните тела на камшичетата и митохондриите се губят в черни цветове (фиг. 7.8, 1).
Методът на Giemsa позволява диференцирана стерилизация на ядрата и други клетъчни органели. Водородите, отстранени от клетъчната мембрана, се фиксират с метанол и осмиев (IV) оксид; Други се получават след хидролиза със солен оксид. Преди подготовка се препоръчва материалът да се опъне с 1 n. НС1 при 60°С. След това старателно изплакнете киселината с дестилирана вода. За приготвяне на vikary разреждания на barvnik: 1-2 капки от основния barvnik на 1 ml вода; час подготовка 20-60 мин. Бързо изплакнете ферментиралите препарати с дестилирана вода, прекарайте през безводен ацетон, смесвайки ацетон и ксилен в съотношение 2:1, ацетон и ксилен в съотношение 1:2, ксилен и поставете в кедрово масло. Ядреният хроматин и хромозомите са маркирани в червено - червено-виолетов цвят, ядрата - в синьо, хлоропластите - в светло синьо (пиреноидите са без ленти), а флагелите и техните базални тела - в светлосин цвят.
Ферментация на клетъчната мембрана. За да подобрите химическата природа на целулозната мембрана, добавете 0,01% рутин от череша (реагент на базата на пектин) и хлор-цинк-йод (20 g цинков хлорид, 6,5 g калиев йодид, 1,3 g кристален йод в 10,5 ml вода), което превръща целулозата в син цвят. За да се разкрие структурата на повърхността на лигавицата, папилите се обелват с 0,1% воден разтвор на тинтява виолет, който също добре запечатва слузта. За да откриете слуз, освен това изпражнете труповете, за да не проникне слузта вътре, но не го търкайте добре. Подробности за структурата на повърхността на тъканните повърхности са ясно видими в 5% воден нигрозин. За да се излекуват обвивките на тънките водорасли, те се покриват с KOH и след това се пълнят с конгоански червеи.
Ферментация на флагели. Флагелите се виждат в светлинен микроскоп за допълнителна подготовка от Lefler. За целта материалът се фиксира с осмиев (IV) оксид, накисва се за кратък час в абсолютен спирт и се оставя да изсъхне. След това добавете струйка капчици от боровинка (количество от 100 ml 20% воден разтвор на танин, 50 ml влят воден разтвор на FeSO 4 и 10 ml влят алкохолен разтвор на основен фуксин) и загрейте над половината на вилицата, без да довеждате до варете, докато се появи пара. След изплакване с дестилирана вода, пригответе препарата за 10 минути с карболфуксин (100 ml 5% воден разтвор на прясно дестилиран фенол и 10 ml влят алкохолен разтвор на основен фуксин; престоява 48 години, след това се филтрира и съхранява три часа с дестилирана вода, оставете да изсъхне и поставете. В канадския балсам този метод може да се използва за определяне на наличието или отсъствието на косми върху флагела (фиг. 7.8, 2, 3).
Присаждане на хлоропласти, стигма; изчерпване на пиреноидите. Хлоропластите са вградени в жив материал, а фрагментите се деформират поради фиксирането на миризмата. Също така е важно да се избягва стигмата. Corpus albuginea perenoid след предна фиксация се третира добре от Altman. Барвник се състои от 1 част пикринова киселина в абсолютен етилов алкохол, 7 части 50% етилов алкохол и 1 част воден разтвор във фуксин. Баражът продължава най-малко 2 години. Торенето на протеинови тела от пиреноиди може да се извърши без предварително фиксиране на материала, като се използва оттокармин С. Добавете 55 ml вода и 5 g азокармин C към 4 ml ототова киселина, може да се вари около една година, да се изпари, да се охлади , прецежда се и се съхранява в съд с тъмно стъкло Добавете капка вода с водорасли към предметното стъкло, покрийте го с извито стъкло и го дръжте под микроскоп. Протеиновото тяло на пиреноида се оцветява в интензивно червено, докато бялото тяло на пиреноида е светлокафяво (фиг. 7.8, 4).
Разкриване на асимилати. Нишестето се оцветява в синьо под въздействието на всякакви реагенти за отстраняване на йода. Най-чувствителният от тях е хлоралният йод (фрагментирани кристали на йод под формата на хлоралхидрат) - той ви позволява да откриете най-големите зърна нишесте и да отделите нишестето около переноида като стромален (фиг. 7.8, 5, 6). ). Наличието на парамилон може да се установи чрез разреждането му с 4% KOH. Наличието на хризоламин се разкрива само чрез няколко сложни микрохимични реакции. Маслото и мазнините се корят със Судан III (0,1 g Судан III в 20 ml абсолютен етилов алкохол) в червен цвят и с осмиев (IV) оксид в черен (фиг. 7.8, 7).
Вивчени вакуоли. Вакуолите с целулозен сок стават маркирани поради обичайното торене със слаб разтвор на неутрално червено. Пулсиращите вакуоли могат да се наблюдават върху жив материал под светлинен микроскоп поради тяхната периодична поява и стерилност. Суспензията на устройство за фазов контраст, добавянето на 1% воден разтвор на танин и фиксирането на материала с осмиев (IV) оксид улесняват идентифицирането на тези органели.
Митохондриално изчерпване. Митохондриите са добре наситени със свободен достъп до 0,1% янусова зелена киселина (фиг. 7.8, 8). Затова капвам вода с водорасли върху пързалката и я покривам с извита пързалка веднага след добавяне на хамбар.
Лечение на апарата на Голджи. Апаратът на Голджи потъмнява по време на часа на фиксиране на материала с осмиев (IV) оксид. Його може да се приготви и с 0,5% воден трипан блекит; 0,01% воден разтвор на метиленов плакет се разтваря вместо клетки в син цвят, при което апаратът на Голджи става безбарварен.
Методи за приготвяне на трайни препарати
За приготвяне на стабилни препарати използвайте глицерин-желатин. Една част желатин се смесва с 6 части дестилирана вода в продължение на няколко години, след което се добавят 7 части чист глицерин и антисептичен кристал, например тимол или карболова киселина. Сместа се загрява на водна баня, като се разбърква със стъклена пръчица до разтваряне на желатина. За да утаите калачи, добавете суров яйчен белтък и филтрирайте през хартиен филтър, като почиствате с горещ филтър и често сменяте хартията. Охлаждането на глицерин-желатина може да даде представа. Когато се влеят, те се разтопяват чрез нагряване на водна баня. Тази среда се комбинира най-добре с вода, но когато е замръзнала, няма нужда от сух изсушен материал.
Пригответе препаратите възможно най-скоро: добавете вода и глицерин и оставете да изсъхне за около час; след това нанесете капка разтопен глицерин-желатин върху загрято предметно стъкло, прехвърлете водата от него и го покрийте с извито стъкло; След като глицерин-желатинът е напълно покрит, ръбът на извитото стъкло се покрива с лак. Такива препарати могат да бъдат запазени в хоризонтално положение чрез опъване на няколко въжета.
Още по-добре се запазват препаратите, поставени в канадски балсам или синтетични смоли на базата на метилметакрилат. Останалата течност е втвърдена, прозрачна, химически неутрална и има съответен светъл индекс. Преди да бъде поставен в канадски балсам или синтетични смоли, материалът трябва да премине цялостен процес на напояване чрез висококачествени алкохоли до абсолют и карамфилово масло или ксилен, което подобрява неговата бистрота. Материалът, приготвен по метода на Гимза, се поставя в кедрово масло възможно най-бързо, в което се съхранява за неопределено време.
Конкретни методи за приготвяне на препарати се основават на Bacillariophyta, Dinophyta и Desmidiales, чиято таксономия се основава на структурата на клетъчните обвивки (div.). Подготовката на диатомеите преди микроскопия включва намаляване на всички органични вещества, което потъмнява структурата на черупката. Това може да се постигне или чрез пържене на материала, или чрез третиране с концентрирани минерални киселини, или с кисела киселина. Когато избирате първия метод, изпуснете суспензията, изсипете в малка купа и поставете диатомит, нанесете върху чиста обезмаслена повърхност, изсушете и, като поставите върху чиния от слюда, изпържете върху половината лист за печене или върху териториална плоча от смърч докато всички органични вещества изгорят напълно (в течение на деня и повече). При ферментация на бентосни диатомеи с дебели черупки пърженето се извършва в електрическа пещ при температура 450°C. Ако извитата повърхност се стопи при нагряване, материалът се пържи върху слюдени плочи и след това се прехвърля върху извитата повърхност. Методът на пържене ви позволява да запазите най-много фрагменти и нежни черупки от планктонни видове, което не унищожава естествения растеж на клетките в колонията и запазва малко количество проследим материал. Въпреки това пробите, замърсени с голям брой органични вещества, се третират най-добре химически.
При студена обработка с киселини пробите трябва първо да бъдат почистени от груби органични и минерални отлагания върху годишна плоча, отстранени от формалдехид и соли с дестилирана вода и след това оставени да престоят или центрофугирани. Отстранете утайката от гъбата, налейте концентрирана сярна киселина, след това добавете калиев дихромат или калиев нитрат към спагетите и измийте спагетите с дестилирана вода, последвано от центрофугиране, докато киселината се отстрани напълно.
Инструктирайте горещата смес да се втвърди с киселини по студения метод. На тази надморска височина първо се вари 10-15 минути с разредена солна киселина и след това се изплаква. Отстранете утайката с минимално количество вода, прехвърлете я в колба, добавете най-малко пет пъти количеството концентрирана сярна киселина или азотна киселина, като напълните колбата не повече от половината, и кипнете във вода или бани под абсорбатор с дължина 15 минути - 1 година. добавяне на KNO 3 кристали. След като охладите утайката, използвайте пипета, за да я прехвърлите в епруветка с вода, като внимателно добавите киселина и диатомеи към водата, за да премахнете кипенето и разпръскването на киселината, и разбъркайте утайката, докато настъпи неутрална реакция.
След пържене или третиране с киселини, материалът се консервира с 2-3% формалдехид за по-нататъшно консервиране или веднага се викоризира за приготвяне на трайни препарати. При този метод, върху тънка, чиста, немазна повърхност, нанесете суспензия от целулозни диатомеи и я оставете да изсъхне. Поставете малко количество синтетична смола (плевракс, хиракс и ин) с индекс на сложност на светлината 1,6 върху предмета, разтопете го върху половината на ботуша и го покрийте с извита повърхност със следния материал, като внимателно натиснете върху нова и деликатна среда. Излишъкът от средното вещество се счита за допълнителен ксилол.
Диатомеите, които имат много тънки и деликатни черупки, се отглеждат на сухи препарати с варен център. За да приготвите суспензия с диатомит, нанесете я върху повърхността, оставете я да изсъхне, поставете я върху повърхност и запечатайте краищата с лак.
При инокулиране на Desmidiales и бронирани Dinophyta, материалът се накисва в кранова вода, което премахва неговото избистряне. За да приготвите солена вода, смилайте 20 части хлор, изпарете се в 100 части вода, добавете 100 части 15% калиев карбонат и оставете за няколко години, след което ще получите много вода. Към филтрата постепенно се добавя калиев карбонат, докато се появи утайката. След повторно филтриране течността се излива, съдът се затваря плътно в тъмно стъкло и се съхранява на тъмно. Вземете крайния материал в центрофуга, изсипете 1-2 чаши солена вода в утайката, плътно затваряйки съда със запушалка. Измийте материала по този начин 2-3 пъти с дестилирана вода. За да се разкрие структурата им, се препоръчва черупките на динофитите да се оцветяват с трипан блекит или алкохолен йод след избистряне с вода.
За декалцификация на водорасли, покрити с вода (например Charophyceae) или живеещи във воднисти скали (твърда вода), добавете млечна киселина, която също се комбинира с препарата, и за този въпрос викоринова солна киселина.
Методи за вибрационни размери на водорасли
При инокулиране с видовия състав на водораслите размерите им варират, което е важен диагностичен признак. За да подравните микроскопични обекти, поставете окуляра-микрометър върху линията за подравняване (фиг. 7.9). Цената на секциите на окулярния микрометър се изчислява за допълнителния обектен микрометър (обект с нанесена върху него линия, цената на кожния участък е 10 µm; Фиг. 7.9), индивидуално за кожния микроскоп и предметната тива (доклад див.). При изчисляване на линейните размери на водораслите е необходимо да се извърши калибриране на голям брой проби (10-100) с усъвършенствана статистическа обработка на извлечените данни.
Всички обекти, които се рисуват, трябва да бъдат внимателно боядисани с помощта на допълнително оборудване за рисуване (RA-4, RA-5) и в същото време фотографирани с помощта на приставка за микрофото (MFN-1, MFN-2).
При идентифицирането на водораслите трябва да се постигне точност. Предимно оригинален материал, необходимо е да се отбележат незначителни подобрения в диагностиката на размера, формата и други морфологични характеристики, запишете ги във вашите описания, на бебета, крофотографии.
При ясно вземане на проби от проби е важно да се определи честотата на определени видове въз основа на умствени индикации. Има различни скали за оценка на честотата на растеж на водорасли. Подобно на дупето, скалата на Starmach е насочена по-ниско: + - Много рядко (типът не присъства в препарата на кожата); 1 - единичен (1-6 копия на препарат); 2 – малко (7-16 копия на препарат); 3 - подред (17-30 копия на препарат); 4 – богат (31-50 копия на препарат); 5 - много богат, абсолютно предимство (над 50 копия на лекарството).
Трансмисионната и сканиращата електронна микроскопия намира все по-широко приложение в алгологичните изследвания. Методите за приготвяне на препарати и изследването им с допълнителен трансмисионен и сканиращ електронен микроскоп са описани в специализирана литература.
Методи за образуване на водорасли
Някои проби от фитопланктон, фитобентос и перифитон могат да бъдат подложени на киселинна форма. Данните за изобилието на водораслите са важни за определянето на тяхната биомаса и трансформацията на други течни показатели (пигменти, протеини, мазнини, въглехидрати, витамини, нуклеинови киселини, елементи, интензивност на храносмилането, фотосинтеза и др.) на клетка или на единица биомаса. Броят на водораслите може да се изрази в броя на клетките, ценобиите, колониите, фрагментарните нишки на пеещия гълъб и др.
За да определите броя на водораслите, нанесете върху специални чаши с черупки (графически на ивици и квадрати), върху повърхността на които с помощта на пипета за печат (фиг. 7.10, 1) нанесете капка вода в добре смесена смес (около 0,1 cm 3) Lidzhuvanoj проба. При липса на медицинско стъкло можете да използвате оригиналното предметно стъкло, за да преместите микроскопа върху микроскопската маса за допълнителни препарати. Ако няма пипети за печат, използвайте оригиналната градуирана пипета, за да отрежете долната удължена част, за да направите входния отвор по-широк. За да определите броя на водораслите, стагнирайте същите камери Najotta с обем 0,01 cm 3 (фиг. 7.10, 2), „Uchinsky” (0,02 cm 3) и т.н. обем 0,9 mm 3 (фиг. 7.10, 3, 4), Fuchs-Rosenthal et al. Когато използвате камери на Goryayev и Fuchs-Rosenthal, внимателно разтрийте кривата върху страничните повърхности на предметното стъкло, докато се появи пръстенът на Нютон, и след това напълнете камерата с капка от проследената проба с помощта на пипета. В зависимост от броя на организмите в готовата проба, всички или част от следите (квадрати) могат да бъдат третирани върху повърхността на втвърдяващото се стъкло. Необходимо е да се направи многократно вземане на няколко (поне три) капчици от една и съща проба, като незабавно с пипета се вземат пробите за почистване след вземане на пробата.
Нарастване на изобилието на фитопланктона. При по-нататъшно тестване на широкомащабни проби от фитоплактон (или културна суспензия от водорасли), промяната в броя на организмите на 1 литър вода варира според формулата
където N е броят на организмите в 1 литър вода в проследимия воден резервоар (културна среда); k е коефициент, който показва колко пъти обемът на обработващата камера е по-малък от 1 cm 3 ; n – брой организми, идентифицирани на разменените пътеки (квадрати); A - броят на пистите (квадратите) на медицинската табла (при камерата); a - броят на пътеките (квадратите), където има отлагания на водорасли; V - проба от кочани (разделение 3); υ - удебелена проба (разделение 3).
Промяна в числеността на бентоса и перифитона. При инжектиране на големи проби във фитобентос и перифитон, които са еднакво големи организми, е важно те да се щамповат с пипета за печат с обем 0,1 cm 3 . Определете изобилието на водорасли в проби от бентос и перифитон върху 10 cm 2 повърхност на субстрата, като използвате формулата
където N е броят на организмите на 10 cm 2 от повърхността на субстрата; n е броят на организмите във водните капки с обем 0,1 cm 3; - obsyag probi (cm 3); 5 - площта на тръбата, изрязана в микробентометър (за бентосни проби) или зоната на повърхността на субстрата, която съдържа водорасли (за проби от замърсяване) (cm 2).
Развитие на числеността на епифитните водорасли. При инокулиране на епифитни водорасли техният брой също се добавя към 1 g сурова (или изсушена на въздух) водораслова маса-субстрат по следната формула:
където N е броят на организмите на 1 g сурова (светло-суха) растителна маса-субстрат; n е броят на организмите във водните капки с обем 0,1 cm 3; - obsyag probi (cm 3); R - сира или въздушно суха маса (ж) тези участъци от роса-субстрат, за които ще бъдат премахнати епифитите.
Калций вместо водорасли, пробите най-често показват показатели за тяхната биомаса, които показват допълнителни лекарствени, обемни, обемни, различни химикали (радиовъглерод, хлорофил, Ilovy и др.) Методи.
Стойност на биомасата. За да се определи биомасата на водораслите с помощта на метода мащаб-обем, е необходимо да се извлекат данни за тяхното изобилие в конкретна кожна проба за конкретна кожна проба и в техните средни случаи (за тип кожа в конкретна кожна проба). Има различни методи за измерване на обема на тялото на водораслите. Най-точният метод е стереометричният метод, при който при изчисляване на което и да е тяло водата се приравнява на всяко геометрично тяло или комбинация от такива тела, след което те се изчисляват с помощта на известните в геометрията формули на една линия, определяща размерите на конкретни организми. Понякога те използват готови, предварително изчислени средни телесни материали за различни видове водорасли, както се намира в трудовете на много автори (разд. библиографски съобщения на стр. 318). Дебелината на водата на сладководните водорасли се приема 1,0-1,05, хиперхалните водорасли - 1,1-1,2. Биомасата трябва да бъде защитена за типа кожа и след това добавена. Кръговият обемен метод за идентифициране на биомаса се използва широко в практиката на хидробиологичните изследвания на голям брой различни компоненти на биоценозите, моделите на разпространение на водораслите в различни биотопи Някои водни тела и различни водни тела, сезонна и водна динамика, развитие на водорасли и др.
В случай на интензивно развитие на водорасли е възможно да се ускори процесът с помощта на водния метод. Когато пробата се тества, филтрирайте я през хартиен филтър (в същото време дестилираната вода се филтрира през контролни филтри). След това извадете филтрите и ги изсушете в сушилня при 100°W. Въз основа на изтеглените данни се изчислява сухата и сухата маса на обсадата. В бъдеще може да се използва спукване на филтри в муфелна пещ вместо обсада на органични вещества.
Недостатъците на този метод са във факта, че той дава индикация за общата сума на цялото значение на пробата от органични и неорганични вещества, живи организми и неодушевени къщи, същества и растения. Въвеждането на представители на няколко таксона в тази обща маса може да бъде приблизително изразено в масови фракции след излагане под микроскоп на тяхното взаимодействие в няколко зрителни полета.
Повечето външна информация за биомасата на водораслите може да бъде определена чрез комбиниране на редица различни методи за проследяване.
Планктонни водорасли (фитопланктон)
Фитопланктон- Колекция от малки, много микроскопични водорасли, които плуват свободно в една и съща вода. Това е основната екологична група водорасли, която произвежда първична органична вода, без която е невъзможно да се открие целия живот във водно тяло. В процеса на еволюция планктонните водорасли са развили ниски структури, които им позволяват да останат близо до водата за дълго време. При планктонните водорасли, които нямат камшичета, повишената плаваемост се постига чрез значителна еднаква форма на тялото и наличието на различни структури и придатъци, четина, рогови придатъци, peretinok ta in. Други форми на планктонни водорасли са представени от плоски или празни колонии, които са ясно видими като слуз. Много водорасли се натрупват в кулминацията на реката с по-малко от една храна (например мазнина, масло) или създават газови вакуоли. Една от особеностите на планктонните водорасли, която им позволява да съществуват в общи води на определена територия, е различната големина на тялото им. Поради по-малкия си размер и следователно малка маса, планктонните водорасли не потъват толкова бързо на дъното с водата.
Планктонните водорасли висят около водни обекти с голяма надморска височина, като езера, дренажни басейни и малки езера. Типичният фитопланктон е особено характерен за големи водни тела.
В зависимост от размера си фитопланктонните водорасли се делят на мезо-, микро- и нанопланктон.
Водораслите с размери 1-5 mm се пренасят в мезопланктонния фитопланктер. Това е безбройна група колониални организми. Sphaeronostoc kihlmaniта в.). Водораслите с големина на тялото от 50 µm до 1 mm достигат групата на микропланктонните организми. Нанопланктонните организми покриват тялото с размери по-малки от 50 микрона. Когато се вземат проби от планктонен слой, вонята лесно преминава през суха тъкан.
В сладководния планктон най-голямо разнообразие се намира в зелените, диатомеите и цианите. Сред зелените са ясно представени едноклетъчни, ценобиални и колониални видове (видове) Volvox. Хламидомонада, Гониум, Пандорина, Еудорина, Волвокс) и Chlorococcus (видове от реката Pediastrum, Scenedesmus, Oocystis, Golenkinia, Sphaerocystis, Chlorella, Kirchneriella, Ankistrodesmus и др.). Характерни представители на диатомовите водорасли в планктона са видовете канопи Мелосира, Фрагилария, Табелария, Астерионела, Циклотела.Цианите често и ясно се оформят като планктерии. Microcystis, Anabaena, Aphanizomenon, Gloeotrichiaта в. От камшичести форми в сладководния планктон, първичните динофити - Цератийі Перидин; От златни - видове сенници Динобрион, Маломонас, Уроглена, Синурата ин.; от евгленоиди - видове сенници Trachelomonas, Phacus, EuglenaИ останките ясно се развиват в други водни тела, които се затоплят добре.
В меки води на блатисти води и води се развива броят на представителите на desmidea: видове сенници Closterium, Cosmarium, Euastrum, Staurastrum, Micrasterias, Xanthidium, Desmidiumта в.
Близо 1000 вида планктонни водорасли са наблюдавани в различни водоеми и водни течения на Беларус.
Видовият състав на фитопланктона и неговият брой варират в различните водни тела и могат да бъдат намерени в едно водно тяло по различно време, лежащо сред съвкупността от богати служители. Най-важни са светлината, температурата и химичните условия, както и антропогенният принос. Остава в някои случаи да доведе до изчерпване на фитопланктона, в други – до значително повишаване на тяхната продуктивност. Когато голям брой биогенни потоци навлизат във водата, настъпва бурно развитие на планктонни водорасли, което оцветява водата в зелено, синьо-зелено и други цветове. Това явление е породило името „цвят“ на водата, тъй като 1 литър вода съдържа милиони клетки от планктонни водорасли. В резултат на масовото им разпространение може да се види наводнение от вода и други токсични вещества, които могат да доведат до смъртта на зооценозите от вода. Трябва да се вземат предвид следите и тези, че токсичните вещества изглежда са причинени от различни водорасли (например видове Микроцистис) в процеса на техния живот.
Ефектът от осветлението като служител на околната среда се проявява ясно във вертикалното разделяне на фитопланктона. В езерата, например, планктонните водорасли се задържат на върха на водата, но могат да се развият на дълбочина 10-15 м. Водораслите са способни да се развиват, докато зеленината стане по-ярка. Най-интензивно е през лятото. И така, водораслите на балдахините Microcystis, Anabaena, AphanizomenonВ масата се развиват само белите на повърхността на водата. Mensh са в състояние да достигнат леки диатомични водорасли. Повечето от тях в плитките води на езерото и водосборните басейни се развиват по-интензивно на дълбочина 2–3 m.
Температурният фактор също е един от най-важните фактори, влияещи върху фитопланктона. Има видове, които се развиват по-рядко в студени водоеми; Можете да видите какво е да виждате води с топла вода. Има много водорасли в сгради, където можете да живеете близо до водите, където температурният диапазон на Коливан е още по-голям.
Тъй като температурният оптимум при различни видове планктонни водорасли не се поддържа, има промяна във видовия модел на сезоните (сезонна сукцесия). Вегетационният цикъл на фитопланктона започва от бреза-квитна. По това време масовите планктери имат различни флагелати. Chromulina, Cryptomonasброят на видовете студеноводни диатомеи нараства – Мелосира, диатома. През другата половина на пролетта студеноводният диатомитен комплекс се развива бързо. Притокът изглежда е умерено топловодни диатомеи – Asterionella, Tabellaria, Зелените и синьо-зелените водорасли се развиват по-интензивно. През другата половина на лятото синьо-зелените и зелените водорасли достигат своето максимално развитие, което може да причини „оцветяване” на водата. Диатомеите през периода включват топловодни представители на короните Фрагиларияі Мелосира гранулата. През пролетта студеноводните двуатомни заедно със синьо-зелените водорасли започват да се развиват по-интензивно, които ще продължат да се развиват.
Природната вода съдържа различни химични съединения, необходими за развитието на фитопланктона. Най-важните от тях са минералните соли (биогенни елементи). От минералните соли в развитието на фитопланктона (и водораслите) са необходими соли на азот и фосфор. По правило във водните зони очевидно няма достатъчно сполук. Елементите на хранене с водорасли включват слюнка и калций. Лакомите водорасли са богати на диатомеи и десмидии. Силицият е необходим за формоването на черупката на диатомеите. Магнезият, калият и сярата също са основни елементи за водораслите, но във водата винаги има достатъчно от тях.
Планктонните водорасли са основните, а често и единствените производители на първична органична материя, която е необходима за оцеляването на всички живи същества във водните тела. Планктонните водорасли участват активно в самопречистването на водата. Мулетата, сапропелите и други отлагания се образуват от потопени планктонни водорасли. Образуват се планктонни водорасли като индикатори за запушване на водата. Вонята може да бъде източник на протеини, витамини и овощни градини за много индустрии.
Водораслите могат да се събират от ранна пролет до късна есен, а подземните води могат да се събират на места, непокрити със сняг.
За да ги съберете, трябва да вземете буркани с широко гърло и добре прилягащи запушалки, торбичка за тях, дъно, остра стъргалка, мрежа от планктон, крушка с формалдехид, кутии или полиетиленови торбички за събиране на смлени водорасли, хартия за етикети, тетрадка, .
Методите за събиране и инокулиране на водорасли се определят от екологичните и морфологични характеристики на представители на различни видове и екологични групи. Нека разгледаме основните методи за събиране и инокулиране на водорасли с вода за целите на флористично-систематични и отчасти хидробиологични изследвания.
Събирайте фитопланктон.Изборът на метод за събиране на проби от фитопланктон трябва да се основава на вида на водните тела, етапа на развитие на водораслите, задачата на изследването, очевидните устройства и др. При метода за промяна на видовия състав на фитопланктона, при интензивно развитие на останалата вода, достатъчно вода се загребва от водните тела, а при слабо развитие предната концентрация на микроорганизми във водата става застояла. Един от тези методи е филтриране на вода през планктонни дренажи (описание на планктонни дренажи и други устройства за събиране на водорасли (Топачивски, Масюк, 1984)).
Когато събирате планктон от повърхността на топките с вода, спуснете мрежата за планктон близо до водата, така че горният отвор на мрежата да е на 5-10 см над водната повърхност. С помощта на малък съд се загребва вода от повърхностната топка (до 15-20 см дълбочина) и се излива в средата, като по този начин се филтрират 50-100 литра вода. При големи водни тела пробите от планктон се събират от шеврона: издърпайте планктонната мярка върху тънка кука зад шеврона, който се свива, с дължина 5-10 минути. За вертикално събиране на планктон се използват огради vikorist със специален дизайн. В малки водоеми пробите от планктон могат да се събират от брега, като внимателно се загребва вода със съд пред вас и се филтрира през мярка или се хвърля мярка на тънка нишка във водата и внимателно се изцежда. Този метод дава възможност за събиране на нейстонови водорасли (епинеустон, хипонейстон). Пробата от планктон се концентрира по този начин и се излива в подготвен чист буркан в чаша от сито за планктон през видима тръба. Често пробите от планктон могат да бъдат култивирани в живо или фиксирано състояние.
За измерване на фитопланктона трябва да се вземат проби със специални устройства - батометри - с различен дизайн. Практиката за премахване на батометъра на системата Rutner е широко разпространена. Основната му част е цилиндър, изработен от метал или плексиглас, с вместимост от 1 до 5 литра. Регулирайте горната и долната капачка, за да затворите плътно цилиндъра. Спуснете батометъра във водата, като използвате затворените капаци. След като достигнат необходимата дълбочина в резултат на силно смачкване на шишчето, капаците затварят вратите на цилиндъра, които при затваряне се изтеглят на повърхността. Напълвам бутилките с вода през тръбата на варела, с кран и я изсипвам в подготвения съд. При инокулиране на фитопланктон от повърхностните водни сфери, пробите се вземат без помощта на батометър чрез загребване на вода в контейнер. Във водни тела с беден фитопланктон е важно да се събират проби с обем най-малко 1 литър успоредно с умерени колекции, което ви позволява да улавяте безброй, равномерно големи обекти. Във водни обекти, богати на фитопланктон, обемът на киселинната проба може да бъде променен до 0,5 или увеличен до 0,25 l (например с "оцветена" вода).
Концентрирането на твърди проби за фитопланктон може да се извърши по два метода, които дават приблизително еднакви резултати - утаяване и филтриране.
Кондензация на проби използвайки метода на обсадатаизвършете след предишното им фиксиране и оставете на тъмно място за 15-20 дни. След това средното топче с вода внимателно се поставя зад друга стъклена тръба, единият край на която се затяга с мрежесто сито № 77 при купата с топчетата, а другият се свързва с маркуч за дъвка. Вземете сгъстената проба, регулирайте обема и я прехвърлете в по-малък съд.
Когато кондензирате проби чрез филтриране, използвайте „предни“ или бактериални филтри.
Събирайте фитобентос.За да се култивира специфичният запас от фитобентос на повърхността на водоема, е достатъчно да се опъне слой дънна почва и да се наслагва върху новия. В плитки води (до 0,5-1,0 м дълбочина) можете да достигнете с друга епруветка или сифон, спуснат на дъното - хумино маркуч със стъклени тръбички в краищата, в които да накиснете хумината. На глинени дълбочини пробите се събират с помощта на сито или бутилка, прикрепена към пръчка, както и различни гребла, улуци, драги, драги, смукателни помпи и др.
Съберете перифитон.Чрез прилагане на вида към перифитона се отлагат отлагания по повърхността на различни подводни обекти (камъчета, натрошени камъни, камъни, стъбла и листа от високи растения, черупки на мекотели, дървени и бетонни части от хидравлични спори и др.) Използвайте обикновен нож или специални скрепери. В този случай обаче много организми ще умрат; Някои от тях се отнасят от потоци вода, органите за закрепване на водораслите към субстрата се срутват и моделът на взаимно разположение на компонентите на биоценозата се разрушава. Поради това е по-добре водораслите да се съберат наведнъж от субстрат, който се изтегля внимателно или често върху повърхността на водата, така че течението да не отмие водораслите. Подготвеният субстрат (или негов фрагмент) се поставя с водорасли в съд, приготвен за пробата и напълнен с малко количество вода и вода, като допълнително се инкубира събраният материал в живо състояние или с 4% намаление на формалдехид.
Земя, или замърсени водораслисъберете, ако е възможно, веднага от субстрата от стерилни хартиени торби или бутилки, съдържащи 4% формалдехид.
Методи за събиране и vivchennya Смлени водораслидоклади от специализирана литература (Hollerbach, Shtina, 1969).
Етикетиране и фиксиране на проби. Vedennya поле Schodennik. За да премахнете водорасли от живо или неподвижно растение, разделете събрания материал на две части. Живият материал се поставя в стерилен стъклен съд (епруветки, колби, буркани), затворен с памучни тапи, които не горят, или в стерилни хартиени пликове. За по-добро запазване на водораслите в живо състояние в експедиционните резервоари водните проби се опаковат в мека хартия и се поставят в кутии. Винените проби периодично се разопаковат и се поставят на светло място, за да се подпомогнат фотосинтетичните процеси и да се обогати средата с киселинност.
Материалът, който насърчава фиксацията, се поставя близо до чисто измити и изсушени стъклени съдове (епруветки, купи, буркани), плътно затворени с коркови или гумени запушалки. Водните проби се фиксират с 40% формалдехид, добавен до концентрация от 0,1 на взета проба. Водораслите, които са върху твърд субстрат (хартиени филтри, камъчета, празни черупки от миди и др.), се пълнят с 4% формалдехид. Доброто опазване на водораслите и тяхното съхранение също ще осигури отстраняването на формалдехид и хромирана оплетка (5 ml 4% формалдехид и 10 g K 2 SO 4 -Cr 2 (SO 4) 3 -24 H 2 O 500 ml вода) . По принцип можете да комбинирате йод с калиев йодид. Разтворът се приготвя по следния начин: 10 g KI се разтварят в 100 ml вода, добавят се 3 g кристален йод и 100 ml вода, разклаща се до пълното разтваряне на кристалите, съхранява се в тъмна бутилка за няколко месеца. Преди тестване добавете 1:5. Херметически затворени, фиксирани проби могат да се съхраняват на хладно и тъмно място до три часа.
Zibran се опитайте да етикетирате внимателно. На етикетите, които са пълни с обикновена маслина или паста, посочете номера на пробата, часа и мястото на събиране, целта на събиране и името на събирача. Тези данни се записват в полеви дневник, който освен това включва резултатите от pH, температурата на водата и вятъра, схематично описание на водния резервоар, който се развива в нова водна среда Други предпазни мерки.
Избраният материал се прилага внимателно.Материалът първо се изследва под микроскоп в живо състояние в деня на събиране, за да се определи чистото състояние на водораслите преди момента на промяната, като се запази живият материал или се фиксират проби (създаване на репродуктивни колонии, загуба на флагели и слабост и др.). След това те се обучават паралелно в жив и фиксиран етап. При работа с жив материал е необходимо успешно да се инокулира важна част от водораслите, за да се промени формата на тялото, формата и замърсяването на хроматофорите, които губят флагели, ронливост или като цяло Боли при фиксиране. За да запазите събрания материал жив, предпазвайте го от прегряване, запушване със скоби и извършвайте процеса възможно най-бързо.
Водораслите в живо състояние, в зависимост от размера на други характеристики, се измерват с помощта на допълнителна бинокулярна стереоскопична лупа (MBS-1) или светлинни микроскопи.
За микроскопско третиране на водорасли пригответе препарати: нанесете капка ряпа върху обекта, който ще наблюдавате, и го покрийте с извито стъкло. Ако водораслите живеят във вода, те се поставят близо до капка чешмяна вода или напоен с глицерин. Струва си да се помни, че със старото инжектирано лекарство зоната под извития наклон постепенно изсъхва и е необходимо да се добави инодът. За да промените изпарението, нанесете тънка топка парафин по ръбовете на извитата чаша.
Ако е необходимо да се погрижите за самия обект, методът с висяща капка дава добър резултат. На чиста повърхност нанесете малка капка готово зърно, след което ръбовете на извивката се намазват с парафин, парафиново масло или вазелин, поставете капката надолу върху специална повърхност с дупка в средата, така че капката да не стърчи дъното на дупката. Това лекарство може да се прилага в продължение на няколко месеца, като се запазва по време на почивките между работата във вологична камера.
С навлизането на водорасли, които нарушават монадната структура, сериозен срив води до нейната крехкост. Въпреки това, когато приемате лекарството, болката постепенно се успокоява и се забавя. Укрепването на сместа се постига и чрез леко нагряване на препарата или добавяне на черешово лепило. Препоръчва се водораслите да се фиксират с изпарения на осмиев оксид (който помага за запазване на флагела), кристален йод (фиксацията с йод позволява не само да се запазят флагела, но и да се приготви нишесте, както и син цвят, който има по-голяма диагностична стойност ), 40% формалдехид, слаб разтвор на хлоралхидрат или хлороформ. Ефективността на излагане на двойки фиксатори се определя експериментално в зависимост от спецификата на обекта. Най-трудните препарати са слабо фиксираните, в които някои от водораслите са загубили своята ронливост, а други продължават да са доста ронливи. Препаратите се обработват веднага след фиксацията, като фрагментите се деформират за кратък период от време.
Когато вътрешните клетъчни структури са заразени, особено при други флагелати, е необходимо да се използва смес от слаби разреждания (0,005-0,0001%) от неутрално червено, метиленово черно, неутрално черно, трипаново червено, диамантено-крезил синьо, конго червено, зеленината на Янус разкрива тъканната мембрана, папулите, слузта, вакуолите, митохондриите, апарата на Голджи и други органели.
Bagato Barvnikiv дава добър резултат от лъжите на празнината на специалните методи на fіksatsіі (с Vivchenna formaldegiz, пробите на barvniki е лишеят на лишаването от запазване на поклонението на дистроилизирания от дестилирания резервоар). Най-краткият фиксатор за цитологично изследване на водорасли, включително развитието на тяхната ултраструктура, е 1-2% доза осмиев оксид (дозата не позволява спестяване на тривал). Водораслите, които не оцветяват здравите клетъчни мембрани, могат лесно и бързо да бъдат фиксирани с метанол. Разтворът на Лугол (1 g калиев йодид и 1 g кристален йод в 100 ml вода) не само фиксира добре водораслите, но и незабавно елиминира нишестето в сини цветове.
За имплантиране на ядра можете успешно да използвате алкохолно-октоличен фиксатор на Clark (три части 96% етилов алкохол и една част оксоева киселина) или разтвор на Cornoy (шест части 96% етилов алкохол, три части хлороформ и една част оксоева киселина ). Оставете водораслите в прясно приготвения фиксатор за 1-3 години, след което изплакнете с 96% етилов алкохол (2 пъти) и вода (10 пъти). Трябва да се отбележи, че в случай на цитологична инфекция на водорасли в повечето случаи е важно да се изберат най-ефективните фиксатори, маркери за хамбар и време на експозиция въз основа на спецификата на обектите. Ще станат достъпни и други методи за приготвяне на ядра.
Флагелите се виждат в светлинен микроскоп за допълнителна подготовка от Lefler. За целта материалът се фиксира с осмиев оксид, накисва се за кратък час в абсолютен спирт и се оставя да изсъхне. След това добавете струйка капчици от боровинка (количество от 100 ml 20% воден разтвор на танин, 50 ml влят воден разтвор на FeSO 4 и 10 ml влят алкохолен разтвор на основен фуксин) и загрейте над половината на вилицата, без да довеждате до варете, докато се появи пара. След изплакване с дестилирана вода, пригответе препарата за 10 минути с карболфуксин (100 ml 5% воден разтвор на прясно дестилиран фенол и 10 ml влят алкохолен разтвор на основен фуксин; престоява 48 години, филтрира се и се съхранява Потопете се в дестилирана вода за три часа, оставете да изсъхне и се изсипва в канадски. С този метод е възможно да се определи наличието или отсъствието на камшичета за коса. Мониторингът на дължината на флагелите, естеството на тяхната структура и мястото на закрепване се извършват върху жив материал. използвайки метода на фазово разпръскване.
Хроматофорите се отпечатват върху живия материал, така че се деформират, когато миризмата се фиксира. Така че е важно да запазите стигмата. Corpus albuginea perenoid след предна фиксация се третира добре от Altman. Барвник се състои от една част наситен разтвор на пикринова киселина в абсолютен етилов алкохол и седем части наситен воден разтвор на фуксин. Подготовката е с продължителност минимум 2 години.
Ферментацията на протеинови тела на пиреноиди може да се извърши без предварително фиксиране на материала с помощта на оттокармин G. За което 55 ml вода и 5 g азокармин се добавят към 4 ml оттоева киселина ямка G. Otrimanu успява да вари около една година, vikoristuyu и обратния хладилник, охладете го, има съдове от тъмно стъкло. Добавете капка вода с водорасли към предметното стъкло, покрийте го с извито стъкло и го дръжте под микроскоп. Протеиновото тяло на пиреноида се оцветява в интензивно червено, докато цветът на протеина е светлокафяв.
Нишестето се оцветява в синьо под въздействието на всякакви реагенти за отстраняване на йода. Най-чувствителният от тях - хлорал йод (фрагментирани кристали йод под формата на хлорал хидрат) - ви позволява да идентифицирате най-големите гранули от нишесте и да разпаднете нишестето около переноида като стромален. Наличието на парамилон може да се установи чрез разреждането му с 4% KOH. Наличието на хризоламин се разкрива само чрез сложни микрохимични реакции. Маслото и мазнините се корят със судан (0,1 g судан в 20 ml абсолютен етилов алкохол) в червен цвят или осмиев оксид в черен цвят.
Вакуолите с целулозен сок стават маркирани поради обичайното торене със слаб разтвор на неутрално червено. Пулсиращите вакуоли могат да се наблюдават върху жив материал под светлинен микроскоп поради тяхната периодична поява и стерилност. Суспензията на устройството за фазов контраст, добавянето на 1% воден разтвор на танин и фиксирането на материала с осмиев оксид облекчават откриването на тези органели.
Митохондриите са добре запазени (със свободен достъп до киселина) с 0,1% Janus Greens. Затова капвам вода с водорасли върху пързалката и я покривам с извита пързалка веднага след добавяне на хамбар.
Апарат на Голджи при фиксиране на материала с тъмен осмиев оксид. Його може да се приготви и с 0,5% воден трипан блекит. Вместо това, целулозата се влива с 0,01% метилен блекит в син цвят, по което време апаратът на Голджи е лишен от шип.
При инокулиране с видовия състав на водораслите размерите им варират, което е важен диагностичен признак. За да вибрирате микроскопични обекти, поставете окуляра-микрометър с вибрираща линийка. Цената на секциите на окуляра-микрометър се изчислява за всеки обект-микрометър (обектът с нанесена върху него линия, цената на кожния участък е 10 микрона) индивидуално за кожния микроскоп и обектива (подробности Ishe div. в книгата Gollerbach, Polyansky, 1951). Когато се определят линейните размери на водораслите, симулацията трябва да се извърши за голям брой копия (10–100) с последваща статистическа обработка на данните.
Всички предмети, които се боядисват, се боядисват внимателно с помощта на допълнителна бояджийска техника (RA-4, RA-5) и се заснемат с микрофотоприставка (MFN-11, MFN-12).
При идентифицирането на водораслите трябва да се постигне точност. Предимно оригинален материал, необходимо е да се отбележат незначителни промени в размерите, формата и други морфологични характеристики, да се запишат в описания, на малки снимки и микроснимки.
Техника за студено образуване на водорасли.Колиформът може да съдържа проби от фитопланктон, фитобентос и перифитон. Данните за изобилието на водораслите са важни за определяне на тяхната биомаса и трансформацията на други химични показатели (пигменти, протеини, мазнини, въглехидрати, витамини, нуклеинови киселини, на тези елементи, интензивността на метаболизма, фотосинтезата и др.) на клетка или единица биомаса. Броят на водораслите може да се изрази в броя на клетките, ценобиите, разклонените нишки на пеещия гълъб и др.
Изобилието на планктонни водорасли се измерва с помощта на камери (Fuchs-Rosenthal, Nageotta, Goryaev и др.) с микроскоп, увеличен 420 пъти. Ще премахна възможно най-малко от трите резервоара средното количество водорасли, за да осигуря отново чистото водоснабдяване.
Тъй като подводни обекти (камъни, паднали дървета, храсти, същества и др.) могат да бъдат субстрат за заселване на водорасли, то в някои случаи количеството водорасли ще покрие една площ, а в други – една маса. Например, когато са обрасли с водорасли във водорасли или водорасли-макрофити, може да се използва метод за незабавно разглеждане: първо, водораслите, които са обрасли, се третират и след това епифитите се отстраняват от тях. Растежът на вазата позволява биомасата да расте. Ако замърсяването не изисква метода на растеж, след това измийте замърсяването от целия макрофит или като го окачите и го разредете с вода до желания обем (не повече от 500 ml). Екстрахираната суспензия трябва да се вдиша под микроскоп по същия начин, както при вземане на проби от планктон, и да се преекспонира на цялата суспензия. По този начин премахнете броя на клетките на епифитните водорасли за цялото растение или растение.
За образуването на големи водорасли и дънни макрофити ( Фукуси) възможно е да се създадат квадратни рамки с размери 0,5 x 0,5 m (0,25 m2), 0,25 x 0,25 (0,0625 m2), 0,17 x 0,17 m (0 0289 m 2); за тип дрибъл водорасли КоралЛината в. - размери 0,1 х 0,1 м (0,01 м 2) и 0,05 х 0,05 м (0,0025 м 2). Рамката се поставя върху израстъка, като всички загубени в нея водорасли се избират със скалпел или нож и се измерват на технически везни в лабораторията с точност до 0,1 g на 1 m2. Подобна характеристика на отделението на макрофитите показва моделът на разрези на най-типичните места. Ширината на разреза може да бъде 5-10 m, а дъното на разреза, което се измерва с рулетка, трябва да лежи под дъното. Чрез удължаване на разреза през 0,5–25 m се полагат рамките на изображението на kilkis. С помощта на този метод е възможно да се определи естествената биомаса на макрофити и други форми. За идентифициране на биомасата е необходимо да се знае повърхността на дъното в рамките на наблюдаваната зона. Посочва се визуално и точно (визуално).